| 【発明の名称】 |
遺伝的に改変された細胞を含む生体適合性免疫隔離カプセル |
| 【発明者】 |
【氏名】イー．エドワード ベイジ
【氏名】ヨセフ ピー． ハマング
【氏名】フランク ティ． ジェンタイル
【氏名】マーク ディ． リンドナー
【氏名】シェリー アール． ウィン
【氏名】ドゥエイン エフ． エメリッチ
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| 【要約】 |
【課題】ヒトへの移植のためのヒトのＣＮＳへ増殖因子または栄養因子を送達するための生体適合性カプセルを提供することを、本発明の課題とする。
【解決手段】本発明に従って、ヒトへの移植のためのヒトのＣＮＳへ増殖因子または栄養因子を送達するための生体適合性カプセルであって、そのカプセルは１つ以上の細胞を含み、そしてその細胞は、１日あたり１〜１５００ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、カプセルが提供される。また、本発明に従って、１つ以上の細胞を含むカプセル化された細胞システムも、提供される。 |
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヒトへの移植のために該ヒトのＣＮＳへ増殖因子または栄養因子を送達するための生体適合性カプセルであって、該カプセルは１つ以上の細胞を含み、該細胞は１日あたり１〜１５００ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、カプセル。
【請求項２】
前記増殖因子がヒト神経成長因子である、請求項１に記載のカプセル。
【請求項３】
ヒトの脳室内に移植される、請求項１に記載のカプセル。
【請求項４】
ヒトの実質内に移植される、請求項１に記載のカプセル。
【請求項５】
前記細胞が１日あたり１０〜６００ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、請求項１に記載のカプセル。
【請求項６】
前記細胞が１日あたり１０〜１５０ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、請求項１に記載のカプセル。
【請求項７】
前記細胞が１日あたり５０〜５００ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、請求項１に記載のカプセル。
【請求項８】
前記増殖因子または栄養因子が、エリスロポエチン、成長ホルモン、サブスタンスＰ、ニューロテンシン、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ＰＤＧＦ、ｂＦＧＦ、およびａＦＧＦからなる群より選択される、請求項１に記載のカプセル。
【請求項９】
第二の生物学的な活性分子を産生する細胞を包含する、請求項１に記載のカプセル。
【請求項１０】
半透膜を含有するカプセルであって、該膜は、選択的透過性である内壁表面、非選択的透過性の外壁表面、およびそれらの間の小柱壁を含有し、該外壁表面がマクロポアを含み、該マクロポアが該外壁表面の総面積の約２．０〜２０％の間を構成し、そして直径が約５〜１５μｍの範囲である、カプセル。
【請求項１１】
前記カプセルが円柱中空ファイバーを形成するように成形される、請求項１０に記載のカプセル。
【請求項１２】
前記カプセルが平面シートを形成するように成形される、請求項１０に記載のカプセル。
【請求項１３】
前記マクロポアが前記外壁表面の総面積の約２．５％を構成する、請求項１０〜１２のいずれか１項に記載のカプセル。
【請求項１４】
前記マクロポアが前記外壁表面の総面積の約１０％を構成する、請求項１０〜１２のいずれか１項に記載のカプセル。
【請求項１５】
前記マクロポアが前記外壁表面の総面積の約１２％を構成する、請求項１０〜１２のいずれか１項に記載のカプセル。
【請求項１６】
１つ以上の生体適合性カプセルを含むヒトＣＮＳへの移植のためにカプセル化された細胞システムであって、各カプセルは１つ以上の細胞を含み、該細胞は増殖因子または栄養因子を産生し、該カプセル化された細胞システムは、１日あたり１〜１５００ｎｇの増殖因子または栄養因子を産生する、細胞システム。
【請求項１７】
前記増殖因子がヒト神経成長因子である、請求項１６に記載のシステム。
【請求項１８】
１日あたり１０〜６００ｎｇの神経成長因子を産生する、請求項１６に記載のシステム。
【請求項１９】
１日あたり１０〜１５０ｎｇの神経成長因子を産生する、請求項１６に記載のシステム。
【請求項２０】
１日あたり１０〜６００ｎｇの成長因子または栄養因子を産生する、請求項１６に記載のシステム。
【請求項２１】
１日あたり１０〜１５０ｎｇの成長因子または栄養因子を産生する、請求項１６に記載のシステム。
【請求項２２】
１日あたり５０〜５００ｎｇの成長因子または栄養因子を産生する、請求項１６に記載のシステム。
【請求項２３】
前記増殖因子または栄養因子が、エリスロポエチン、成長ホルモン、サブスタンスＰ、ニューロテンシン、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ＰＤＧＦ、ｂＦＧＦ、およびａＦＧＦからなる群より選択される、請求項１６に記載のシステム。
【請求項２４】
少なくとも１つのカプセルが、第二の生物学的な活性分子を産生する１つ以上の細胞を含む、請求項１６に記載のシステム。
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【発明の詳細な説明】【技術分野】
【０００１】
本発明は、生物学的活性分子を宿主へ送達するための改良された生体適合性カプセルに関する。特に、この改良されたカプセルは、特定のマクロポア（ｍａｃｒｏｐｏｒｅ）の分布ならびにマクロポアのサイズ範囲によって特徴付けられた外表面の形態を有する。さらに本発明は、生物学的活性分子の長期間の安定な発現、およびそれら生物学的活性分子の送達、そして特にこのような発現および送達を達成する生体適合性免疫隔離（ｉｍｍｕｎｏｉｓｏｌａｔｏｒｙ）カプセルに含有された遺伝的に改変された細胞の使用のための改良されたデバイスおよび方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
多くの臨床的状況、不全、および疾患の状態は、生きた細胞によって産生される１つまたは複数の因子を患者に与えることによって、あるいは生きた細胞によって代謝される有害な因子を患者から除去することにより処置されるか、または軽減される。多くの場合これらの因子は、器官または組織の機能の損傷または損失を回復させるか、あるいは補うことができる。疾患の原因が分泌性の器官または組織の機能の損失を包含する疾患または不全状態の例は、（ａ）膵臓のランゲルハンス島によるインスリンの産生が損傷または損失される糖尿病；（ｂ）上皮小体ホルモンの産生の損失が血清カルシウムのレベルを低下させ、その結果重篤な筋肉のテタニーにつながる上皮小体機能不全症；（ｃ）ドーパミンの産生が減少するパーキンソン病；および（ｄ）エリスロポエチンの欠陥から派生する赤血球産生の損失により特徴付けられる貧血症を包含する。器官または組織の機能の損傷あるいは損失は、結果としてさらなる代謝機能の損失になり得る。例えば、劇症的な肝臓の機能不全において、肝臓組織は、毒物の除去、細胞の代謝産物の排泄、そしてアルブミンおよび第ＶＩＩＩ因子のような必須産生物の分泌が不可能となる。Ｂｏｎｔｅｍｐｏ，Ｆ．Ａ．ら（１９８７）Ｂｌｏｏｄ，６９，ｐｐ．１７２１−１７２４を参照。
【０００３】
他の場合、これらの因子はリンホカインまたはサイトカインのような生物学的応答修飾因子であり、これらは患者の免疫システムを高めるか、あるいは抗炎症剤として作用する。これらは慢性寄生性または感染性疾患を持つ個人に特に有用であり、そしてある種の癌の処置にも有用であり得る。
【０００４】
患者に次のような栄養因子を与えることも望ましい。例えば、神経成長因子（ＮＧＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ニューロトロフィン−３（ＮＴ−３）、ニューロトロフィン−４／５（ＮＴ−４／５）、線毛性（ｃｉｌｉａｒｙ）栄養因子（ＣＮＴＦ）、グリア細胞株由来栄養因子（ＧＤＮＦ）、コリン作動性分化因子／白血病阻害因子（ＣＤＦ／ＬＩＦ）、表皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）、塩基性繊維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）などである。
【０００５】
多くの疾患または不全状態において、冒された器官または組織は、常態では特定の代謝物のレベルの変動に応答するよう機能し、それによって恒常性を維持する。例えば、海馬のニューロンは高レベルのＮＧＦを産生し、これが海馬を刺激する前脳部コリン作動性ニューロンの基礎量を直接維持する。このニューロンにより産生されるＮＧＦのレベルが減少すると、この生体構造に対するコリン作動性のインプットが失われる結果になり、そしてアルツハイマー病に見られる老化に関連した記憶の損傷にいたる。
【０００６】
神経系においては、絶え間なく低レベルの栄養因子を送達することは、成長因子依存性細胞集団の健康を維持するのに十分である。アルツハイマー病およびハンチントン病のような慢性的疾患においては、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦおよびＣＤＦ／ＬＩＦのような神経栄養因子の１つまたはそれ以上を長期間送達することが、神経の生存能力を維持するために要求され得る。この成長因子は脳血液関門（ｂｌｏｏｄ−ｂｒａｉｎ ｂａｒｒｉｅｒ）を越えることができないので、全身投与による送達は不可能である。従って、この神経栄養因子は中枢神経系（ＣＮＳ）へ直接送達されなければならない。
【０００７】
多くの研究者が、分泌された産生物を提供するか、あるいは代謝機能に作用するような全器官、組織または細胞を移植することによって、器官または組織の機能を再構成、増加あるいは置換することを試みた。さらに、移植は劇的な恩恵を与えることはできるが、移植に適する入手可能な器官の数がかなり少ないので、その適用には限界がある。一般的には、患者は移植による免疫拒否を回避するために免疫抑制されなければならない。この拒否反応は一般に移植物の機能を損失させ、そして最終的には移植された組織または細胞の壊死を起こす結果になる。しかし、多くの場合において移植物は、たとえ患者の生涯の残された時間の間であっても、長期間機能し続けることが望ましい。患者をかなりの期間免疫抑制の状態に維持するのは、望ましくなくそして経費もかかる。
【０００８】
移植の手法に用いられる別のアプローチは、細胞または組織を半透過性の天然のバリア内に移植することであるが、このバリアは、栄養物、老廃物そして分泌産物を拡散させるが、免疫拒否反応を起こす細胞性および分子性エフェクターの有毒な影響を最小にする。選択された産生物を産生する組織または細胞を免疫系から保護する種々のデバイスまたはカプセルが探索された。これらは、血管外の拡散チャンバー、血管内の拡散チャンバー、血管内の限外濾過チャンバーおよびマイクロカプセル化された細胞の移植を包含する（Ｓｃｈａｒｐ， Ｗｏｒｌｄ Ｊ． Ｓｕｒｇ．，８，ｐｐ．２２１−９（１９８４）。このデバイスは、患者を免疫抑制の状態にしておく必要性を軽減し、そのために従来の移植術では用い得なかった提供者の細胞または組織の使用を許すことによって、より多くの患者が機能回復する移植または、別の有益な移植を受けられるので、移植の分野における著しい進歩を提供するものであると予見された。
【０００９】
カプセル化された細胞の使用は、免疫系の成分がカプセルへ入りこむのを防ぎ、それによってカプセル化された細胞を免疫破壊から保護する。この技術は、処置に使用され得る細胞タイプの多様性を増加する。カプセル膜の半透性はまた、目的の分子をカプセルから周囲の宿主組織へ容易に拡散させる。この技術は、腫瘍の形成という固有の危険性を防ぎ、そしてレシピエントが免疫抑制を起こさずに不適合なヒトまたは動物組織の使用を可能にする。さらに、移植物は必要あるいは所望ならば回収され得る。このような回収可能性は、多くの臨床状況において必須である。
【００１０】
外表面の形態は、カプセルの強度、カプセルの回収可能な性質を包含する種々のパラメーター、および長期間にわたって生存細胞を支持するためのカプセルの能力に影響を与え得る。
【００１１】
長期間にわたってカプセル化された細胞が生存でき、そして破損することなくより簡単に回収されるようなカプセルを提供することが望まれる。
【００１２】
種々の外表面の形態を有するカプセル化のデバイスが非常に多く知られている。カプセルは、その外表面の形態に応じて、タイプ１（Ｔ１）、タイプ２（Ｔ２）またはタイプ４（Ｔ４）に分類されてきた。このような膜は、例えば Ｌａｓｙら，「カプセル化された膵臓ランゲルハンス島の皮下異種移植片による糖尿病マウスの正常血糖の維持」，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５４，ｐｐ．１７８２−８４（１９９１）および Ｄｉｏｎｎｅら，ＰＣＴ／ＵＳ９２／０３３２７ に記載されている。本発明の新規な膜は、Ｔ１／２と表されるものであり、そしてその全表面部がマクロポアで占められたハイブリットの外表面形態、およびマクロポアの直径が選択された範囲内であることによって特徴付けられている。
【００１３】
必要とされる生物学的な機能を供給するために分裂細胞および細胞系を使用することにより、十分に分化した組織および／または器官に対して数多くの有意な利点が提供される。細胞は、インビトロで多量に増殖させ得、そして貯蔵し得、病原体に関してスクリーニングし得る。さらに細胞および細胞系は、初めの器官または組織よりも遺伝子操作がより容易にできる。非相同的組換えＤＮＡを導入する能力は、移植される細胞の機能あるいは表現型の改変について多くの新たな可能性を与える。これは、移植細胞の処置的使用により広い多様性を与える。
【００１４】
このような操作に使用される細胞を遺伝的に改変するには、レトロウイルスベクターが一般に利用されてきた（Ｇａｇｅら，米国特許第５，０８２，６７０号）。しかし、レトロウイルスの発現ベクターは、異種タンパク質の高レベルで長期間にわたるインビボの発現を提供しないことが知られている。種々の因子が、レトロウイルスのプロモーターの制御下で観察される導入遺伝子（ｔｒａｎｓｇｅｎｅ）発現のダウンレギュレーションに寄与している。この因子は、遺伝的に改変された細胞の休止状態、プロモーター内のＣｐＧ対のメチル化、および選択圧の除去を包含する。哺乳動物のプロモーターにより駆動される大抵の発現ベクターはまた、固有のプロモーターの活性が低レベルであるため、従来の移植の凡例（ｐａｒａｄｉｇｍ）に最適であるわけではない（Ｍ．ＳｃｈｉｎｓｔｉｎｅおよびＦ．Ｇａｇｅ，神経性疾病の処置に対する分子的および細胞的研究アプローチ、Ｓ．Ｇ．Ｗａｘｍａｎ編、Ｒａｖａｎ Ｐｒｅｓｓ ｐｐ．３１１−３２３（１９９３）を参照）。
【００１５】
ＣＮＳにおけるレトロウイルスのプロモーターのダウンレギュレーションに関する問題に加えて、遺伝子処置でレトロウイルスを使用するには、別の不利益がある。例えば、遺伝的要素を含有するウイルスに予め曝されるか、または現在感染されるかによって、移植された哺乳動物の宿主内で組換え事象が起こり、その結果、複製欠損ウイルスが生きたウイルスに改変するようになる可能性についての深刻な問題がある。さらに、感染性ウイルス粒子を用いての作業は、その試薬を生産しそして投与する研究室の作業員および専門医に対する安全性を損なうという問題がある。最終的には、これらの問題によって、研究者および専門医ならびに監視当局の間で危険性についての理解が深められた。
【００１６】
遺伝子操作された細胞をカプセル化するか、あるいはカプセル化しない両方の形態でインビトロ移植が行なわれたが、非相同ＤＮＡの長期間の安定な発現は、満足すべき結果が得られなかった。例えば、最近公表された研究（Ｈｏｆｆｍａｎら，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ，１２２，ｐｐ．１００−１０６（１９９３年８月））は、ラットの中枢神経系（ＣＮＳ）へＮＧＦを送達させるため、マウスＮＧＦを分泌するように遺伝子操作された同種異系の細胞をカプセル化して使用する方法に言及している。記載された系におけるＮＧＦ遺伝子の発現は、レトロウイルスのプロモーターによって制御された。上記のように、レトロウイルスのベクターは、インビボで長期間の安定な導入遺伝子の発現を引き起こさない。従って、その研究に報告された方法は、長期間の処置的適用に適さない。
【００１７】
従って、適切な量の必要物質（例えば、成長因子、酵素およびホルモン）を遺伝的に改変された細胞から長期間にわたって送達する方法は未だ利用し得ず、そして長期間の処置が必要なときには極めて有益となる。さらに、移植された細胞中の導入遺伝子のインビボでの長期間の安定な発現を維持する方法も利用し得ず必要とされている（例えば、ＳｃｈｉｎｓｔｉｎｅおよびＧａｇｅ（１９９３）、前出、３２１頁を参照）。
【００１８】
従って、インビボでの導入遺伝子の長期間の安定な発現を容易にする遺伝的改変を受けた細胞を導入するデバイスおよび送達方法の必要性が残っている。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００１９】
（発明の要旨）
本発明は、哺乳動物宿主内の生物学的機能に影響を与えるまたは促進するために、生物学的活性分子の効果的な送達のための、遺伝学的に操作された細胞を含む生体適合性カプセルを用いて、生物学的活性分子の長期の安定な発現のための改良したデバイスおよび方法を提供する。本発明の新規のカプセルは、生体適合性であり、そして容易に回収される。本発明は、詳細には、改良した方法および組成物を提供し、これらは、生物学的活性分子をコードし、プロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされた細胞を利用し、このプロモーターは哺乳動物宿主への移植の際にインビボでダウンレギュレーションを受けない。さらに、本発明の方法は、所定の哺乳動物内で生細胞から特定の部位への、生物学的活性分子の長期の安定な効率的な送達を可能にする。さらに、本発明は、維持のための一般的な手段、延長した期間の導入遺伝子のインビボの発現のための一般的な手段を提供する。
【００２０】
本発明は、宿主哺乳動物に移植されたときカプセル化された細胞を長期間生存させることができ、そしてより簡単に回収し得る新規なＴ１／２ハイブリッドカプセルを提供する。
【００２１】
本発明は、生体適合性のカプセルを用いて、生物学的活性分子を長期間安定に発現させるためのデバイスおよび方法を提供する。このカプセルは、哺乳動物宿主内で生物学的機能をもたらすか、または高めるような生物学的活性分子の効果的な送達のために遺伝子操作された細胞を含有する。本発明は、組換えＤＮＡ分子を移入した細胞を利用する改良された方法および組成物を特に提供するし、哺乳動物宿主に移植されたときインビボでダウンレギュレーションを受けないプロモーターと作動可能に連結された生物学的活性分子をコードするＤＮＡ配列を含有する。さらに本発明の方法は、生物学的活性分子を生きた細胞から所定の哺乳動物内の特定部位へ長期間安定でそして有効な送達を提供する。本発明は、長期間にわたってインビボでの導入遺伝子の発現を維持する一般的な手段を提供する。さらに本発明は、老化に関連する（ａｇｅ−ｒｅｌａｔｅｄ）認識障害を処置するデバイスおよび方法を提供する。
【００２２】
従って、本発明は、以下を提供する。
１．哺乳動物宿主に生物学的活性分子を送達する方法であって、該方法は生体適合性のカプセルを該宿主に移植する工程を包含し、該カプセルが１またはそれ以上の細胞を含有し、１または複数の該細胞が組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該組換えＤＮＡ分子が、生物学的活性分子をコードし、該生物学的活性分子が長期の安定した発現をするような該宿主において、移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む、方法。
２．前記１または複数の細胞が前記宿主に対して異種である、項目１に記載の方法。
３．前記カプセルが前記哺乳動物宿主の中枢神経系内に移植される、項目１に記載の方法。
４．前記生物学的活性分子が神経栄養因子である、項目１に記載の方法。
５．前記神経栄養因子が神経成長因子（ＮＧＦ）である、項目４に記載の方法。
６．前記プロモーターが、ＰＮＭＴプロモーター、ＤＢＨプロモーター、ＧＦＡＰプロモーター、ＴＨプロモーター、ＮＦ−Ｌプロモーター、ＮＳＥプロモーター、Ｐ０プロモーター、ＭＢＰプロモーター、およびマウスメタロチオネイン−１プロモーターからなる群から選択される、項目１に記載の方法。
７．前記組換えＤＮＡ分子がｐＮＵＴ発現ベクターである、項目１に記載の方法。
８．前記細胞がＢＨＫ細胞である、項目１に記載の方法。
９．前記哺乳動物宿主が霊長類である、項目１に記載の方法。
１０．前記１または複数の細胞がさらに第二の組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該第二の組換えＤＮＡ分子が第二の生物学的活性分子をコードし、該第二の生物学的活性分子が長期の安定した発現をするような前記宿主において、移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む、項目１に記載の方法。
１１．前記カプセルが１または複数の第二の細胞をさらに含有し、該１または複数の第二の細胞が第二の組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該第二の組換えＤＮＡ分子が第二の生物学的活性分子をコードし、該第二の生物学的活性分子もまた長期の安定した発現をするような前記宿主において、移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む、項目１に記載の方法。
１２．哺乳動物宿主においてインビボで移植したカプセル化細胞中での生物学的活性分子の長期の安定した発現のための方法であって、該方法は生体適合性の免疫隔離カプセルを該宿主に移植する工程を包含し、該カプセルが１以上の細胞を含有し、該１または複数の細胞が組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該組換えＤＮＡ分子が生物学的活性分子をコードし、該宿主における移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む、方法。
１３．前記細胞が異種細胞である、項目１２に記載の方法。
１４．前記カプセルが前記哺乳動物宿主の中枢神経系内に移植される、項目１２に記載の方法。
１５．前記生物学的活性分子が、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ＰＤＧＦ、ｂＦＧＦ、ａＦＧＦ、ニューロテンシン、サブスタンスＰ、ヘモグロビン、チロシンヒドロキシラーゼ、プロホルモンコンバターゼ、ｂｃｌ−２、ドーパデカルボキシラーゼ、およびドーパミンβ−ヒドロキシラーゼからなる群から選択される、項目１２に記載の方法。
１６．前記プロモーターが、ＰＮＭＴプロモーター、ＤＢＨプロモーター、ＧＦＡＰプロモーター、ＴＨプロモーター、ＮＦ−Ｌプロモーター、ＮＳＥプロモーター、Ｐ０プロモーター、ＭＢＰプロモーター、およびマウスメタロチオネイン−１プロモーターからなる群から選択される、項目１２に記載の方法。
１７．前記哺乳動物宿主が霊長類である、項目１２に記載の方法。
１８．哺乳動物宿主においてインビボでのカプセルの移植の際に、生物学的活性分子の長期の安定した発現を提供するための移植可能な生体適合性の免疫隔離カプセルであって、該カプセルは以下を含有する：
（ａ）生体適合性マトリックス中で分散する１以上の細胞を含有するコアであって、該１または複数の細胞が組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該組換えＤＮＡ分子が生物学的活性分子をコードし、該宿主における移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含む、コア；および
（ｂ）該コアを取り囲む外部拡散表面ジャケットであって、ここで該ジャケットが細胞の免疫学的拒絶に必須な物質の分子量以下の分子量カットオフを有するが、該哺乳動物宿主と該コアとの間を物質が通過することが可能である、ジャケット。
１９．前記１または複数の細胞が前記宿主に対して異種である、項目１８に記載のカプセル。
２０．前記カプセルが前記哺乳動物宿主の中枢神経系内に移植される、項目１８に記載のカプセル。
２１．前記生物学的活性分子が、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ＰＤＧＦ、ｂＦＧＦ、ａＦＧＦ、ニューロテンシン、サブスタンスＰ、ヘモグロビン、チロシンヒドロキシラーゼ、プロホルモンコンバターゼ、ｂｃｌ−２、ドーパデカルボキシラーゼ、およびドーパミンβ−ヒドロキシラーゼからなる群から選択される、項目１８に記載のカプセル。
２２．前記プロモーターが、ＰＮＭＴプロモーター、ＤＢＨプロモーター、ＧＦＡＰプロモーター、ＴＨプロモーター、ＮＦ−Ｌプロモーター、ＮＳＥプロモーター、Ｐ０プロモーター、ＭＢＰプロモーター、およびマウスメタロチオネイン−１プロモーターからなる群から選択される、項目１８に記載のカプセル。
２３．前記哺乳動物宿主が霊長類である、項目１８に記載のカプセル。
２４．半透膜から形成されるカプセルであって、選択的透過性である内壁表面、非選択的透過性の外壁表面、およびそれらの間の小柱壁を含有し、該外壁表面がマクロポアを含み、該マクロポアが外壁表面の総面積の約２．０〜２０％の間を構成し、そして直径が約５〜１５μｍの範囲である、カプセル。
２５．前記カプセルが円柱中空ファイバーを形成するように成形される、項目２４に記載のカプセル。
２６．前記カプセルが平らなシートを形成するように成形される、項目２４に記載のカプセル。
２７．前記マクロポアが前記外壁表面の総面積の約２．５％を構成する、項目２４〜２６のいずれかに記載のカプセル。
２８．前記マクロポアが前記外壁表面の総面積の約１０％を構成する、項目２４〜２６のいずれかに記載のカプセル。
２９．前記マクロポアが前記外壁表面の約１２％を構成する、項目２４〜２６のいずれかに記載のカプセル。
３０．前記カプセルが項目２４〜２９に記載のカプセルである、項目１に記載の方法。
３１．哺乳動物における神経変性の処置のための方法であって、該方法は該哺乳動物に１以上の細胞を含む生体適合性カプセルを移植する工程を包含し、該細胞が成長因子または栄養因子を生産し、該カプセルが該哺乳動物に１〜１５００ｎｇ／日の成長因子または栄養因子を送達し得るようにする、方法。
３２．前記成長因子がヒト神経成長因子である、項目３１に記載の方法。
３３．前記哺乳動物がヒトである、項目３２に記載の方法。
３４．前記生体適合性カプセルがヒトの脳室内に１０〜６００ｎｇ ＮＧＦ／日を送達し得る、項目３３に記載の方法。
３５．前記生体適合性カプセルがヒトの実質内に１０〜１５０ｎｇ ＮＧＦ／日を送達し得る、項目３３に記載の方法。
３６．哺乳動物のＣＮＳへの移植の際に、成長因子または栄養因子の長期の安定した発現を提供するための生体適合性カプセルであって、該カプセルは１以上の細胞を含有し、該細胞が組換えＤＮＡ分子でトランスフェクトされ、該組換えＤＮＡ分子が成長因子または栄養因子をコードし、ヒトでの移植の際にダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結したＤＮＡ配列を含み、該カプセルが哺乳動物へ１〜１５００ｎｇ／日の成長因子または栄養因子を提供し得る、生体適合性カプセル。
３７．前記成長因子が神経成長因子である、項目３６に記載のカプセル。
３８．前記哺乳動物がヒトである、項目３７に記載のカプセル。
３９．前記カプセルが、脳室内に移植された場合、ヒトに１０〜６００ｎｇ ＮＧＦ／日を送達し得る、項目３８に記載のカプセル。
４０．前記カプセルが、実質内に移植された場合、ヒトに１０〜１５０ｎｇ ＮＧＦ／日を送達し得る、項目３８に記載のカプセル。
４１．前記ヒトが老化に関連する認識障害に罹患している、項目３３〜３５のいずれかに記載の方法。
４２．前記ヒトが老化に関連する認識障害に罹患している、項目３８〜４０のいずれかに記載のカプセル。
【００２３】
（定義）
本明細書に用いられる「生体適合性カプセル」は、カプセルが宿主の哺乳動物に移植されたとき、結果としてカプセルを排除するか、またはカプセルが作用できないようにする（例えば分解によって）のに十分な有害な宿主応答を誘い出さないことを意味する。
【００２４】
本明細書に用いられる「免疫隔離カプセル」は、このカプセルが哺乳動物宿主に移植されたとき、カプセルのコア内の細胞に宿主免疫系が与える有毒な影響を最小限に抑えるカプセルを意味する。
【００２５】
生物学的活性とは、特定の細胞に対する分子の生物学的に有用な効果をいう。本明細書に用いられる「生物学的活性物質」は、細胞内で生物学的活性を発揮する物質をいう。この物質はその細胞の中で作られるか（例えば、アポトーシスを防止するｂｃｌ−２）あるいはその細胞表面上で発現され、そして他の細胞または生物学的活性分子（例えば、神経伝達物質レセプターまたは細胞接着分子）とその細胞との相互作用に影響を及ぼし得るか、もしくはこの物質を作る細胞から放出または分泌され、そして別の標的細胞にその影響を及ぼし得る（例えば、神経伝達物質、ホルモン、成長因子、あるいはサイトカイン）。
【００２６】
プロモーターのダウンレギュレーションは、導入遺伝子の産生物の発現が、インビボでの移植後に導入遺伝子産物の有意な生物学的活性の欠乏につながるレベルまで減少することを意味する。「ダウンレギュレーションを受けないプロモーター」は、哺乳動物宿主内にインビボ移植した後、生物学的に活性であるレベルで導入遺伝子の発現を駆動するかまたは駆動し続けるプロモーターを意味する。
【００２７】
本明細書に用いられる「生物学的活性分子の長期間の安定な発現」は、生物学的活性分子を、その有用な生物学的活性が維持されるのに十分なレベルで、１ケ月以上、好ましくは３ケ月以上そして最も好ましいくは６ケ月以上の期間連続して産生することを意味する。
【００２８】
本明細書に用いられる「老化した」個体は、自然な加齢プロセスの結果、あるいは自然な加齢プロセスに関連した神経変性障害の結果のいずれかで神経の変性が起こったか、または起こりつつある個体である。自然な加齢プロセスの結果としての神経の変性は、以前の状態と比較して神経機能が損失または衰弱することを意味するが、その原因はアルツハイマー病、パーキンソン病またはハンチントン病のような明らかな臨床的異常または神経学的／神経変性的障害ではない。
【００２９】
（発明の詳細な説明）
本発明は、カプセル化された細胞が長期間生存でき、そして容易に回収され得る改良カプセルを指向する。本発明はまた、改良されたデバイスおよび方法を指向する。このデバイスおよび方法は、生物学的活性分子を発現させ、そしてこの分子を宿主の哺乳動物へ長期間安定に送達するために生体適合性カプセルに含まれた遺伝的に改変された細胞を使用することである。
【００３０】
本発明のデバイスおよび方法は、広範な生物学的活性分子（２００ｋＤまでの高分子量の産物を含む）を、それを必要とする個体に長期間安定に発現させ、および／または有害な物質を除去する代謝機能をそれを必要とする個体に提供することに有用である。本発明のデバイスおよび方法に用られる生物学的活性分子は、種々の器官または組織が通常分泌する多種類の因子を包含する。例えば、インスリンは糖尿病患者に、ドーパミンはパーキンソン病の患者に、第ＶＩＩＩ因子はＡ型血友病患者に、あるいは鎮痛剤は疼痛の患者に送達され得る。
【００３１】
本発明の実施に使用され得る他の生物学的活性分子は、エリスロポエチン、成長ホルモン、サブスタンス−Ｐ、ニューロテンシン、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ＰＤＧＦ、ｂＦＧＦ、およびａＦＧＦのような栄養因子を包含する。
【００３２】
本発明のデバイスおよび方法はまた、ヘモグロビン、チロシンヒドロキシラーゼ、プロホルモンコンバターゼ、ｂｃｌ−２、ドーパデカルボキシラーゼ、そしてドーパミンβ−ヒドロキシラーゼを包含する生物学的活性分子を長期間安定に発現させるのに有用である。
【００３３】
本発明による送達に適した別のファミリーは、リンホカインおよびサイトカインを含む生物学的応答調節剤を包含する。
【００３４】
本明細書に記載のカプセル化された細胞は、肝細胞のような細胞による血流からのトキシンまたは有害代謝物（例えば、コレステロール）の除去のような必須の代謝機能を、回復または増強するのにも用い得る。本発明の方法は、レシピエントを処置する間に同時に免疫抑制する必要なしに細胞を移植することを可能にする。本発明の方法を用いることにより、特定の物質の恒常性が回復され、さらに長期間維持され得る。
【００３５】
本発明の範囲内に意図される生物学的活性分子は、カプセルまたは移植された細胞から分泌される分子であって、直接的または間接的に哺乳動物宿主において生物学的な効果をもたらす分子、および直接的または間接的にカプセル内に含まれる細胞に生物学的な効果をもたらす分子を包含する。
【００３６】
本発明の好ましい実施態様は、宿主哺乳動物の中枢神経系（ＣＮＳ）に神経栄養因子を送達するための改良方法である。本発明の特定の実施態様では、神経成長因子（ＮＧＦ）の、哺乳動物宿主のＣＮＳの特定の領域に対する長期間の安定な発現および送達の改良方法が提供される。
【００３７】
多くの生物学的活性分子をコードする遺伝子がクローニングされ、それらのヌクレオチド配列が公表されている。これらの遺伝子の多くは、アメリカンタイプカルチャーコレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ （ＡＴＣＣ）） のような寄託機関または種々の販売元から一般に入手できる。本発明に有用な生物学的活性分子をコードする遺伝子で一般に入手できないものは、ＰＣＲ増幅、オリゴヌクレオチドのプローブを用いるゲノムおよびｃＤＮＡライブラリーのスクリーニングのような標準的組換えＤＮＡ法を用いて入手し得る。生物学的活性分子をコードする既知の遺伝子であればいずれも本発明の方法に用い得る。例えば、米国特許第５，０４９，４９３号； Ｇａｇｅ ら，米国特許第５，０８２，６７０号；および Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ 米国特許第５，１６７，７６２号参照。
【００３８】
本発明に特に有用な遺伝子には、ヒトプロエンケファリンＡ、ヒトプロホルモンコンバターゼ２、ヒトプロホルモンコンバターゼ３、ヒトＢＤＮＦ、ＰＯＭＣ（プロ−オピオメラノコルチン）、β−エンドルフィン、プロジノルフィン、ヒトＮＧＦシグナル配列を有する成熟ヒトＢＤＮＦ、ヒトＣＮＴＦ、ヒトＮＴ３、ヒトＮＧＦ、ラットＧＤＮＦ、ヒトＮＧＦシグナル配列を有する成熟ヒトＮＴ５、ウシドーパミンβヒドロキシラーゼ、ウシドーパミンデカルボキシラーゼ、およびチミジンキナーゼをコードする遺伝子がある。
【００３９】
目的の遺伝子（すなわち、適切な生物学的活性分子をコードする遺伝子）は、標準的な技術を用いて適切な発現ベクターのクローニング部位へ挿入し得る。１個より多い遺伝子を適当な発現ベクターに挿入し得るということが認識される。これらの技術は当業者に周知である。
【００４０】
次いで、目的の遺伝子を含む発現ベクターは、本発明の方法で用いる細胞系をトランスフェクトするのに用い得る。リン酸カルシウム共沈澱、ＤＥＡＥ−デキストラントランスフェクションまたはエレクトロポレーションのような標準的なトランスフェクション技術を用い得る。市販の哺乳動物トランスフェクションキットは、例えばＳｔｒａｔａｇｅｎｅより購入し得る。
【００４１】
目的の生物学的活性分子をコードする遺伝子を発現するために、広範な種類の宿主／発現ベクターの組合せが用いられ得る。長期間安定なインビボでの発現は、その中で生物学的活性分子をコードする遺伝子が、哺乳動物宿主中にインビボで移植されたときにダウンレギュレーションを受けないプロモーターに作動可能に連結しているような発現ベクター（すなわち、組換えＤＮＡ分子）を用いて達成される。従って、そのような発現ベクターは、典型的にはレトロウイルスのプロモーターを含まない。
【００４２】
適切なプロモーターは、例えば、ＳＶ４０の初期および後期のプロモーターまたはアデノウイルスのプロモーターおよび遺伝子発現を制御できる他の既知の非レトロウイルスのプロモーターを含む。
【００４３】
有用な発現ベクターは、染色体、非染色体および合成のＤＮＡ配列（例えば、ＳＶ４０およびＥ．ｃｏｌｉ由来のｐＵＣ、ｐＢｌｕｅ ＳｃｒｉｐｔＴＭ プラスミドのような既知の細菌プラスミドの誘導体（例えば、ｐＢＲ３２２、ｐＣＲ１、ｐＭＢ９、ｐＵＣ、ｐＢｌｕｅ ＳｃｒｉｐｔＴＭおよびそれらの誘導体）のセグメントからなる。
【００４４】
ゲネチシン（Ｇ４１８）またはヒグロマイシン薬剤選択遺伝子を含む発現ベクター（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｐ．Ｊ．（１９８１）， Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ， １８，ｐ． ３１５， Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｐ．Ｊ． および Ｂｅｒｇ，Ｐ．（１９８２），Ｊ．Ｍｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｇｅｎｅｔ．，１，ｐ．３２７）もまた本発明の実施に有用である。これらのベクターは、目的の生物学的遺伝子（例えば、ＮＧＦ）、および／または、Ｇ４１８またはヒグロマイシンＢのようなトキシンによる選択に対する耐性を付与する遺伝子の発現を起動する種々の異なるエンハンサー／プロモーター領域を用い得る。Ｇ４１８耐性遺伝子は、培養培地に添加されたＧ４１８（１００−５００μｇ／μｌ）を酵素的に不活性化するアミノグリコシドホスホトランスフェラーゼ（ＡＰＨ）をコードする。ＡＰＨ遺伝子を発現する細胞のみが薬剤選択から生き残り、第二の生物学的遺伝子をも発現するようになる。ヒグロマイシンＢホスホトランスフェラーゼ（ＨＰＨ）遺伝子は、ヒグロマイシントキシンを特異的に改変し不活性化する酵素をコードする。ヒグロマイシンＢホスホトランスフェラーゼ遺伝子と同じプラスミドと同時にトランスフェクトされるか、またはプラスミドに含まれる遺伝子は、５０−２００μｇ／ｍｌの濃度のヒグロマイシンＢ存在下優先的に発現される。
【００４５】
種々の異なる哺乳動物のプロモーターが、Ｇ４１８およびヒグロマイシンＢの遺伝子および／または目的の生物学的遺伝子の発現を導くために用いられ得る。これらのプロモーターは、ｈＤＢＨ（ヒトドーパミンβヒドロキシラーゼ）のプロモーター（Ｍｅｒｃｅｒ ら，Ｎｅｕｒｏｎ，７，ｐｐ．７０３−７１６，（１９９１））、ｈＴＨ（ヒトチロシンヒドロキシラーゼ）（Ｋａｎｅｄａ ら， Ｎｅｕｒｏｎ，６，ｐｐ．５８３−５９４，（１９９１））、ｈＰＮＭＴ（ヒトフェニルエタノールアミンＮ−メチルトランスフェラーゼ）（Ｂａｅｔｇｅ ら， ＰＮＡＳ，８５，ｐｐ．３６４８−３６５２，（１９８８））、ｍＧＦＡＰ（マウスグリア線維酸性タン白質）（Ｂｅｓｎａｒｄ ら， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．，２６６，ｐｐ．１８８７７−１８８８３，（１９９１））、ミエリン塩基性タン白質（ＭＢＰ）、ｍＮＦ−Ｌ（マウスニューロフィラメント軽鎖サブユニット）（Ｎａｋａｈｉｒａ ら， Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６５，ｐｐ．１９７８６−１９７９１，（１９９０））、ｈＰｏ（ヒトＰｏ、末梢神経系の主要ミエリン糖タン白質をコードする遺伝子のプロモーター）（Ｌｅｍｋｅ ら， Ｎｅｕｒｏｎ，１，ｐｐ．７３−８３，（１９８８））、ｍＭＴ、ｒＮＳＥ（ラットニューロン特異的エノラーゼ）（Ｓａｋｉｍｕｒａ ら，Ｇｅｎｅ，６０，ｐｐ．１０３−１１３，（１９８７））その他を包含するがそれに限定されない。
【００４６】
用いられ得る発現ベクターの例は、市販のｐＲＣ／ＣＭＶ、ｐＲＣ／ＲＳＶ、およびｐＣＤＮＡ１Ｎ ＥＯ（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎ） である。薬剤選択および目的の生物学的遺伝子の転写を支配するウイルスのプロモーター領域は、ＣＮＳ においてウイルスプロモーターが受けるダウンレギュレーションの対象とはならない上記のプロモーター配列の１つと置換される。例えば、ＧＦＡＰプロモーターは星状細胞および星状細胞系のトランスフェクションに用いられ、ＴＨプロモーターはＰＣ１２細胞に用いられ、またはＭＢＰプロモーターは乏突起膠細胞に用いられる。
【００４７】
１つの実施態様において、ｐＮＵＴ発現ベクターが用いられる（図１参照）。さらに、ＤＨＦＲのコーディング配列がＧ４１８またはヒグロマイシン薬剤耐性のコーディング配列により置き換えられるように、ｐＮＵＴ発現ベクターを改変し得る。ｐＮＵＴ発現ベクター中のＳＶ４０プロモーターも、上記のように適切に構造的に発現される哺乳動物のプロモーターと置き換えられ得る。
【００４８】
広範な種類の細胞が用いられ得る。それらは、既知の一般に入手可能な不死化細胞系および分裂中の初代細胞培養株を包含する。適切な一般に入手可能な細胞系の例は、幼若ハムスターの腎臓（ＢＨＫ）、チャイニーズハムスターの卵巣（ＣＨＯ）、マウス線維芽細胞（Ｌ−Ｍ）、ＮＩＨスイスマウス胎児（ＮＩＨ／３Ｔ３）、アフリカミドリザル細胞系（ＣＯＳ−１、ＣＯＳ−７、ＢＳＣ−１、ＢＳＣ−４０、ＢＭＴ−１０およびＶｅｒｏを含む）、ラット副腎クローム親和性細胞腫（ＰＣ１２およびＰＣ１２Ａ）、ＡＴ３、ラットグリア腫（Ｃ６）、星状細胞および他の線維芽細胞系を包含する。 用い得る初代細胞は、哺乳動物のＣＮＳに由来するｂＦＧＦ−応答性神経プロジェニター幹細胞（Ｒｉｃｈａｒｄｓら，ＰＮＡＳ ８９，ｐｐ．８５９１−８５９５（１９９２）；Ｒａｙ ら， ＰＮＡＳ ９０，ｐｐ．３６０２−３６０６（１９９３））、初代線維芽細胞、Ｓｃｈｗａｎｎ細胞、星状細胞、β−ＴＣ細胞、Ｈｅｐ−Ｇ２細胞、乏突起膠細胞、およびそれらの前駆体、筋原細胞などを包含する。
【００４９】
本発明の範囲内のカプセル化細胞による処置に利用され得る細胞のタイプは、同種異系および異種の供給源由来の細胞を包含する。本発明者らのカプセル化のアプローチの主要な利点の１つは、本発明の膜が有する免疫隔離の性質、および移植に適合しない細胞（すなわち、ヒト以外の供給源、不死化および／または腫瘍細胞系）を支持する能力に依存する。同種異系細胞よりも異種細胞を使用する特別の利点は、万一、膜に破損が生じた場合、異種細胞が同種細胞に比べ免疫系による破壊の標的とされ易いということである。さらに、異種細胞の供給源は入手が簡単であり、そしてその使用は、入手が困難でありそして社会的ならびに倫理的考慮を伴うヒトの組織の使用の必要性を排除する。さらにヒトの組織は、移植レシピエントへより容易に送達される外来性物質を含有することができる。最終的に、ヒトに移植するために異種組織および細胞系を用いることは、ヒトの組織の操作および処理に関連する危険性を除外する。
【００５０】
本発明の１つの実施態様において、ｐＮＵＴ増幅発現系を用いてＢＨＫ細胞をトランスフェクトする。しかしながら、目的の遺伝子を含むるｐＮＵＴベクターはまた、前述したようなＣＯＳ、Ｌ−細胞、ＣＨＯなどの多数の他の標準的な不死化または、形質転換された組織培養細胞系をトランスフェクトするために用いられ得る。さらにｐＮＵＴ発現ベクターは、初代の星状細胞、乏突起膠細胞または神経細胞系（例えば前述したｂＦＧＦ−応答性神経プロジェニター幹細胞）へトランスフェクトするために用いられ得る。
【００５１】
本発明によって形質転換された細胞株は、生物学的に活性な分子の長期間の安定な発現を提供し得る。このような長期間の安定な発現は、生物学的に活性な分子をコードする導入遺伝子のコピー数を、当該分野で周知の増幅方法を用いて増加または増幅させることにより達成され得る。このような増幅方法には、例えば、ＤＨＦＲ増幅（例えば、Ｋａｕｆｍａｎら、米国特許第４，４７０，４６１号参照）またはグルタミンシンセターゼ（「ＧＳ」）増幅（例えば、米国特許第５，１２２，４６４号およびヨーロッパ特許出願公開ＥＰ３３８，８４１号参照）が含まれる。
【００５２】
哺乳動物細胞で遺伝子の長期間の安定な発現を得るための別な方法は、２つの異なる薬剤選択マーカーを用いる二重トランスフェクションによる。ヒグロマイシンまたはＧ４１８耐性発現ベクターを用いて上記の多くの細胞株を連続的にまたは同時にトランスフェクトし、種々の遺伝子コピーの挿入を達成し得、従って、目的の遺伝子の発現レベルを達成し得る。
【００５３】
１つの実施態様においては、細胞は、β−ＮＧＦまたはＧＦＡＰプロモーター／エンハンサー因子（通常このベクターに見られるＣＭＶプロモーター配列に取って代わっている）に作動可能に連結した他の目的の遺伝子のコーディング配列を含むプラスミドｐＲＣ／ＣＭＶを用いてトランスフェクトされる。トランスフェクトされた導入遺伝子を発現する安定なクローンの選択の際に、このクローンは、同じｐＲｃ／ＧＦＡＰ ＮＧＦ発現ベクター（Ｇ４１８耐性遺伝子の代わりに細菌ヒグロマイシンＢホスホトランスフェラーゼ遺伝子（ＧｒｉｔｚおよびＤａｖｉｅｓ、Ｇｅｎｅ、ｐｐ．１７９−１８８（１９８３））を有する）を用いて再びトランスフェクトされる。安定なクローンをヒグロマイシンおよびＧ４１８の両方において再選択した後、この細胞は、ＲＮＡおよびタンパク質産物においてトランスフェクトされた導入遺伝子の最大数の組み込まれたコピーおよび／または発現を有するクローンに関してアッセイされ得る。この方式において、複数のベクターを用いてトランスフェクトされた細胞株（高いコピー数の遺伝物質を安定に組み込み、そして種々のレベルで目的の生物学的に活性な分子を発現する）を産生するために、別の組み合わせの薬剤選択発現ベクターを用い得る。
【００５４】
ポリマー−カプセルの移植が有効量の必要な物質または機能を個体に提供するのに十分であり得るように、多数の細胞が本発明の方法において用いられ得る。さらに、１より多い生物学的に活性な分子は、１つのカプセルから長期に亘って安定に発現および／または送達され得る。
【００５５】
この結果に達する１つの方法は、１より多い異種遺伝子を発現するように遺伝的に変更された単一の細胞株をカプセル化することである。
【００５６】
この結果に達する別の方法は、細胞の混合物を単一のカプセルに入れることである。ここで、ある細胞は１つの生物学的に活性な分子を発現するように遺伝的に改変され、別の細胞は第２の生物学的に活性な分子を発現するように遺伝的に改変されている。第２の生物学的に活性な分子を提供するために、遺伝子操作されていない細胞株も利用され得るということが認識されるであろう。
【００５７】
例えば、ある細胞株はまた、遺伝子操作されて異なる生物学的に活性な分子を発現し得る。親細胞株のサブクローンは、それぞれが異なる導入遺伝子を発現するが、このサブクローンはプールされ、カプセルに入れられて所望の効果を長期間達成し得る。
【００５８】
これらのアプローチは、１より多い生物学的に活性な分子を１つの部位に長期間、安定に発現および送達させるために複数の移植物を用いる必要性を排除する。
【００５９】
本発明はまた、異種遺伝子（この遺伝子は、細胞が宿主哺乳動物内に移植される際にカプセル内で生存可能のままであるようにし得る）によって遺伝的に改変されている細胞を含むカプセルを用いることを意図する。言い換えると、本発明の方法はまた、移植されたカプセル内の分子の送達方法に関する。
【００６０】
本発明の特定の実施態様において、本発明者らは、マウスメタロチオネインプロモーターに作動可能に連結したヒトβ−ＮＧＦ遺伝子を含むｐＮＵＴ発現ベクターを用いて、リン酸カルシウム共沈澱法によりＢＨＫ細胞をトランスフェクトした。
【００６１】
種々の生体適合性免疫隔離カプセルは、本発明による分子送達に適切である。このようなカプセルは、宿主免疫系の有害な影響を最少にしながら代謝物、栄養分および処置物質を通過させる。好ましくは本発明のカプセルは、Ａｅｂｉｓｃｈｅｒら、ＰＳＴ公開ＷＯ ９２／１９１９５（本明細書中に参考として援用する）に記載のカプセルと同じである。
【００６２】
最も好ましくは、本明細書に記載されたＴ１／２膜を用いて、本発明の方法に従って改変された細胞をカプセル化する。本明細書に記載されたＴ１／２膜はまた、他のいかなる適切な細胞または細胞株のカプセル化にも用いられ得ることが認識されるであろう。したがって、本発明のＴ１／２膜は初代細胞（ｐｒｉｍａｒｙ ｃｅｌｌ）（非分裂細胞）および分裂細胞をカプセル化するために用いられ得る。
【００６３】
有用な生体適合性ポリマーカプセルは、（ａ）１つの細胞または複数の細胞（液体媒体に懸濁されているか、ヒドロゲルまたは細胞外マトリックス内に固定されている）を含むコア、および（ｂ）単離された細胞を含まない選択透過性マトリックスまたは膜（ジャケット）（生体適合性であり、そしてコアに存在する場合には、単離された細胞を有害な免疫学的攻撃から保護するのに十分である）の周辺または末梢領域を含む。
【００６４】
ポリマーカプセルのコアは、コア内に隔離された細胞の連続した生存能力および機能のために適切な局所環境を提供するために構築される。
【００６５】
多くの形質転換された細胞および細胞株は、液体コアを有するカプセル内に非常に都合よく隔離されている。例えば、細胞は、コアが栄養培地（任意に細胞の生存能力および機能を維持するためのさらなる因子の液体供給源、例えば、胎児ウシ血清、またはウマ血清を含有する）を有するカプセル内に隔離され得る。
【００６６】
マイクロカプセルもまた、時に本発明の方法および組成物における使用に適切であり得る。マイクロカプセルの製造は、Ｅｓｐｅｖｉｋら、ＰＣＴ公開ＷＯ ９１０７９５１号およびＳｅｆｔｏｎ、米国特許第４，３５３，８８８号（本明細書中で参考として援用する）に記載されている。
【００６７】
適切には、コアは、細胞凝集塊中の細胞の位置を安定させるヒドロゲルによって形成されるマトリックスから構成される。本明細書中の用語「ヒドロゲル」は、架橋した親水性ポリマーの３次元網状組織をいう。この網状組織は、ゲルの形態であり、実質的に水からなり、好ましくは９０％以上が水であるゲルであるが、これに限定されない。
【００６８】
ヒドロゲルを形成する組成物は３つのクラスに分類される。第１のクラスは正味で負の電荷（ｎｅｔ ｎｅｇａｔｉｖｅ ｃｈａｒｇｅ）を有する（例えば、アルギネート）。第２のクラスは正味で正の電荷（ｎｅｔ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｈａｒｇｅ）を有する（例えば、コラーゲンおよびラミニン）。市販の細胞外マトリックス成分の例は、ＭａｔｒｉｇｅｌＴＭおよびＶｉｔｒｏｇｅｎＴＭを含む。繊維芽細胞は、一般に正に帯電したマトリックスにおいてよく生存し、従って、細胞外マトリックスタイプのヒドロゲルに適切に封入される。第３のクラスは、電荷的に正味で中性（ｎｅｔ ｎｅｕｔｒａｌ ｉｎ ｃｈａｒｇｅ）である（例えば、高度に架橋したポリエチレンオキシド、またはポリビニルアルコール）。任意の適切なマトリックスまたはスペーサーをコア内で用い得る。これらは沈澱させたキトサン、合成ポリマー、およびポリマーブレンド、マイクロキャリアなどを含み、カプセルに入れられる細胞の成長特性に依存する。
【００６９】
好ましくは、カプセルは免疫隔離である。免疫隔離であるためには、カプセルの周辺または末梢領域は、宿主体内の有害な物質がビヒクルのコアに入るのを防止することによって、および単離された細胞と宿主の免疫系との間の有害な免疫学的接触を防止するのに十分な物理的バリアを提供することによって、カプセルが移植される宿主の免疫系からの細胞の保護を与えるべきである。この物理的バリアの厚さは変化し得るが、それは、常にバリアの両側にある細胞および／または物質の直接の接触を防止するのに十分な厚さである。この領域の厚さは、一般に５ミクロンと２０ミクロンとの間の範囲である；１０ミクロン〜１００ミクロンの厚さが好ましく、そして２０ミクロン〜７５ミクロンの厚さが特に好ましい。このビヒクルの使用によって防止されるかまたは最小化される免疫学的攻撃のタイプは、マクロファージ、好中球、細胞性免疫応答（例えば、ナチュラルキラー細胞および抗体依存性Ｔ細胞介在性細胞溶解（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ Ｔ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｙｔｏｌｏｙｓｉｓ：（ＡＤＣＣ））および体液性応答（例えば、抗体依存性補体介在性細胞溶解）による攻撃を含む。
【００７０】
免疫隔離カプセルの使用は、レシピエントを免疫抑制するという必要を伴わずに、異種細胞または組織の移植を可能にする。免疫隔離カプセルの使用はまた、適合しない（ｕｎｍａｔｃｈｅｄ）細胞（アログラフト）の使用を可能にする。異種細胞に対する免疫応答のタイプおよび活動力は、同系のまたは同種の組織がレシピエントに移植された場合に生じる応答とは異なることが予想される。この応答は、主に細胞介在性の攻撃によって、または補体介在性の攻撃によって生じ得る；特定の場合における決定（ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ） パラメーターは、殆ど理解されていない。しかし、ビヒクルのコアからのＩｇＧの排除は、免疫防御の規準ではない。なぜなら、殆どの場合、ＩｇＧ単独では標的細胞または組織の溶解を生じるには不十分だからである。免疫学的攻撃の仲介に必要である重要な物質が免疫隔離カプセルから排除されているならば、免疫隔離マクロカプセルを用いることによって、必要とされる高分子量の産物を送達すること、または高分子量物質に適する代謝機能を提供することが可能である。このような物質は、補体攻撃複合体成分（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ ａｔｔａｃｋ ｃｏｍｐｌｅｘ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）Ｃｌｑを含み得るか、またはそれらは、食細胞または細胞障害性細胞を含み得る；この免疫隔離カプセルは、これらの有害な物質と隔離された細胞との間に防御的バリアを提供する。従って、免疫隔離カプセルは、異種細胞からでさえ、広範な分子サイズを有する産生物（例えば、インシュリン、副甲状腺ホルモン、インターロイキン３、エリスロポイエチン、アルブミン、トランスフェリン、エンケファリン、エンドルフィン、カテコールアミン、ファクターＶＩＩＩ、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ、ｂＦＧＦ、ａＦＧＦ、ＰＤＧＦ、ＴＧＦなど）の送達に用いられ得る。
【００７１】
種々のポリマーおよびポリマーブレンドを用いてカプセルジャケットを製造し得る。これらは、ポリアクリレート（アクリル酸コポリマーを含む）、ポリビニリデン、ポリ塩化ビニルコポリマー、ポリウレタン、ポリスチレン、ポリアミド、酢酸セルロース、硝酸セルロース、ポリスルホン、ポリホスファゼン、ポリアクリロニトリル、ポリ（アクリロニトリル／コビニルクロライド）、ならびにそれらの誘導体、コポリマー、および混合物を含む。
【００７２】
このカプセルは、生物学的活性を維持し、そして産生物または機能の送達のためのアクセスを提供するのに適切な外形であり得る。たとえば、円筒形、矩形、円盤形、パッチ型、卵形、星形、または球形を含む。さらに、このカプセルは、メッシュ様またはネスト様構造にコイルまたはラップされ得る。カプセルが移植された後に回収される場合には、外形は、カプセルの移植部位からの移動に導く傾向の外形、例えばレシピエントの血管を移動するのに十分に小さい球形カプセルは好ましくない。特定の形、例えば矩形、パッチ形、円盤形、円柱形、および平らなシート形は、より高い構造的に完全な状態を提供し、そして回収が望まれる場合には好ましい。
【００７３】
本カプセルは、隔離された細胞の生存能および機能を維持するため、コア中の任意の隔離された細胞がレシピエントの周辺組織（レシピエントの血流を含む）に少なくとも１次元的に充分近くとなるように提供されなければならない。しかし、カプセルを形成するために用いられる材料の拡散限界をもって、全ての場合におけるその外形の限界を一通りに規定はしない。基本ビヒクルの拡散特性、即ち栄養物または酸素輸送特性を変化し、あるいは増強する特定の添加物が使用され得る。例えば、内部媒体は、酸素飽和ペルフルオロカーボン（ｏｘｙｇｅｎ−ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｐｅｒｆｌｕｏｒｏｃａｒｂｏｎ）で補充され得、このため血液によって運搬された酸素と直接に接触する必要性が減少する。このことにより、隔離された細胞は生存可能でいられるが、一方、例えばアンジオテンシンの勾配がカプセルから周辺組織に放出され、毛細血管の伸長を刺激する。ペルフルオロカーボンの使用についての参考文献および方法は、Ｆａｉｔｈｆｕｌ， Ｎ．Ｓ． （１９８７） Ａｎａｅｓｔｈｅｓｉａ，４２，２３４〜２４２頁およびＮＡＳＡ Ｔｅｃｈ Ｂｒｉｅｆｓ ＭＳＣ−２１４８０， Ｕ．Ｓ． Ｇｏｖｔ． Ｐｒｉｎｔｉｎｇ Ｏｆｆｉｃｅ， Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ， Ｄ．Ｃ． ２０４０２により与えられ、この内容は本明細書中に参考として援用されている。
【００７４】
一つの実施態様において、移植可能なカプセルは、移植後の完全な回収のために充分なサイズおよび耐久性がある。このようなマクロカプセルは、約１〜１０μｌの好ましい最小容積のコアを有し、そして用途に依存して１００μｌを超える容積を有するように容易に構成される。
【００７５】
好ましいカプセルは、６０〜９８％のＢＳＡ排除係数および５０〜９０％のオボアルブミン排除係数の範囲の透過率である透過選択性（ｐｅｒｍｓｅｌｅｃｔｉｖｅ）ポアサイズを有する、内側の単一限外濾過膜を有する。カプセルは、ＰＣＴ出願ＷＯ ９２／１９１９５に記載の通り、外縁がシールされた平面シートの形態、または末端がシールされた中空のファイバーの形態であり得る。平面シートの形式では、２枚の壁が１０００ミクロン未満、好ましくは３００ミクロン未満の隙間の厚さで隔てられている。壁の厚さは約２５〜２００ミクロンの間、好ましくは約３０〜７５ミクロンの間であるべきである。
【００７６】
中空ファイバーの外形では、ファイバーは１５００ミクロン未満、好ましくは３００〜６００ミクロン未満の内径を有する。いずれの外形においても、流体透過率（ｈｙｄｒａｕｌｉｃ ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ）は１〜１００ ｍｌ／分／Ｍ２／ｍｍＨｇの範囲、好ましくは２５〜７０ ｍｌ／分／Ｍ２／ｍｍＨｇの範囲にある。Ｄｉｏｎｎｅら、ＡＳＡＩＯ Ａｂｓｔｒａｃｔｓ， ｐ．９９ （１９９３）およびＣｏｌｔｏｎら、Ｔｈｅ Ｋｉｄｎｅｙ， Ｂｒｅｎｎｅｒ ＢＭおよびＲｅｃｔｏｒ ＦＣ編、２４２５〜８９頁（１９８１）に記載の通り定義され、測定され、そして算出されたカプセルのグルコース物質移動係数は、１０−６ｃｍ／秒より大きく、好ましくは１０−４ｃｍ／秒より大きい。
【００７７】
カプセルの外壁表面の形態は、変化しやすい。先に記載されたＴ１、Ｔ２、Ｔ４膜および本発明の新規のＴ１／２膜は、外壁表面の形態が異なる。これらの全ての膜は、透過選択性の内皮により特徴付けられる。
【００７８】
Ｔ１膜は、「開いた」または窓のある非透過選択性の外壁表面および外壁表面と内壁表面との間の柱状の壁構造により特徴付けられる。例えば、Ｌａｃｙら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５４， １７８２〜８４頁（１９９１）を参照のこと。Ｔ１膜の外壁表面の「マクロポア」の開口部は、代表的には総外壁膜表面積の約２０％〜４０％を占める。代表的に、マクロポアは、直径が１０μｍ〜１５μｍであるかまたはより大きい。
【００７９】
Ｔ２膜は、内壁と外壁との間に類似の柱状構造（ｔｒａｂｅｃｕｌａｒ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）を有するが、さらに「閉じた」またはより平滑な外表面壁によって特徴付けられる。Ｔ２膜は、代表的には、外表面壁上に１０％未満のマクロポアを有し、そして５〜１５μｍの直径サイズの範囲では事実上マクロポアを有さないことを特徴とする。
【００８０】
さらにＴ４膜は、Ｔ１またはＴ２膜とは異なり、外表面も透過選択的である点でさらに異なる。Ｔ４膜は、脳室またはくも膜下腔ならびに液体に浸漬された他の移植部位のようなＣＳＦ移植部位に有用である。
【００８１】
霊長類の脳実質または他の「固形の」組織移植部位に関しては、本発明者らは、細胞に対して実質的に非透過性の平滑壁カプセルを用いることを好む。微小血管新生（ｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌａｒｉｚａｔｉｏｎ）を促進する開口壁について記載しているものもある（例えば、Ｂｒａｕｋｅｒら、ＷＯ／９２／０７５２５を参照のこと）。Ｔ１およびＴ１／２カプセルは、長期間移植物に特に適している。本発明者らはＴ１／２カプセルを好む。
【００８２】
Ｔ１／２カプセルは、総外表面壁面積の約２〜２０％、好ましくは２〜１５％の間の総マクロポア分布によって特徴付けられる。マクロポアは、直径が約５μｍ〜約１５μｍのサイズ範囲内にあるべきである。この範囲内のポアサイズの相対的分布は変化し得る。
【００８３】
１つの特定の実施態様において、ＰＡＮ／ＰＶＣから作成されたＴ１／２中空ファイバー膜カプセルが利用された。この実施態様によると、総マクロポア面積は、総外壁表面積の約１２％であった。マクロポアの約２０％は、直径５〜１０μｍの範囲であり、そしてマクロポアの約８０％は直径が約１０μｍであった。
【００８４】
別の特定の実施態様では、総外壁表面積の約２．４％の総マクロポア面積を有するＴ１／２中空ファイバー膜カプセルが構成された。マクロポアの約１７％は、直径が約５μｍであり、約３３％は直径が約１０μｍであり、そして約５０％は直径が約１５μｍであった。
【００８５】
別の特定の実施態様では、総外壁表面積の約１０％の総マクロポア面積を有するＴ１／２中空ファイバー膜カプセルが構成された。９９％を超えるこれらのマクロポアは、直径が１０〜１５μｍの範囲であった。
【００８６】
任意の標準的な方法を用いて、外表面マクロポアの形態の定量化を行い得る。本発明者らは、２つの方法を使用した。
【００８７】
一つの方法では、走査型電子顕微鏡に、中空ファイバー膜の切片を載せる。次にファイバーの外表面を金でスパッタリングコート（ｓｐｕｔｔｅｒ ｃｏａｔｅｄ）した。１０００×倍率の画像が生じる。１０００×での走査型顕微鏡写真は、約９．２ｋμｍ２ （１１５μｍ×８０μｍ）の面積を含む。これらの画像上では、１０μｍ直径のポアは直径が１ｃｍである。円形のテンプレートを用いて、全てのポアを１５μｍ、１０μｍ、５μｍ、または２．５μｍの直径のいずれかに分類し得る。外壁表面開口（即ちマクロポアとして）の総パーセントを（全ポアが占める面積／顕微鏡写真の総面積）×１００として算出する。同様の計算を用いて、個々のポアサイズを決定する。
【００８８】
自動システムを用いて、定量化を行い得る。上記の通り、中空ファイバー膜切片の１０００×での走査型電子顕微鏡写真画像を調製する。イメージグラバー（ｉｍａｇｅ ｇｒａｂｂｅｒ）を用いて分析用に画像を保存する（ＳＣＩＯＮ Ｉｍａｇｅ）。本発明者らは、ＮＴＨ Ｉｍａｇｅ （バージョン１．５５）と呼ばれるＭａｃＩｎｔｏｓｈ画像処理および分析プログラムを用いて保存された画像を処理した。このソフトウエアは、組織学的サンプルの形態的測定分析を実施するために開発され、そして本発明者らは、これを中空ファイバーの形態測定分析に適応している。各ポアをカウントし、そして直径を割り当てる。総マクロポア面積の算出および個々のポアサイズは上記の通りである。
【００８９】
本発明のＴ１／２ファイバーは、当該分野において既知である任意の適切な方法によって調製され得る。ある方法では、Ｃａｂａｓｓｏ， Ｉ．， Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｌｏｇｙ、１２、４９２〜５１７頁（１９８０）に記載の周知の方法を用いるルミナール（ｌｕｍｉｎａｌ）およびキャスティング（ｃａｓｔｉｎｇ）溶液の流速の適切な調整により、同軸紡糸金口（ｃｏａｘｉａｌ ｓｐｉｎｎｅｒｅｔ）からポリマー性キャスティング溶液と凝集剤との共押出成形を包含する。本明細書中に参考として援用されているＤｉｏｎｎｅ， ＷＯ ９２／１９１９５および米国特許第５，１５８，８８１号、同第５，２８３，１８７号、および同第５，２８４，７６１号に記載の通り、凝集剤は、生物学的組織断片、細胞小器官、または細胞および／または他の治療剤の懸濁液を含み得る。
【００９０】
これらの方法に従って、Ｔ１膜は、急冷浴（ｑｕｅｎｃｈ ｂａｔｈ）に入る前に空気を通してのポリマー溶液および凝集剤溶液の共押出成形によって、形成され得る。Ｔ２膜は、加湿空気またはミスト中そして次にバス中へのポリマー溶液および凝集剤溶液の共押出成形によって、形成され得る。Ｔ４膜は、ポリマー溶液および凝集剤溶液を直接凝集剤バスへ共押出形成することによって、形成され得、このため透過選択性膜の形成が、外壁表面および内壁表面上で同時に起こる。
【００９１】
Ｔ１／２膜は、Ｔ２膜形成に用いられる同様の方法を用いて形成され得る。しかし、所望の外表面形態を作成するための既知の方法に従って、共押出口でミストまたは湿度が制御され得る。あるいは、ルーチン法に従うと、急冷浴からのノズルの距離は変化し得る。さらに、共押出形成を用いて膜をキャストする場合、ポリマーおよび凝集剤の絶対的および／または相対的流速を調整して所望の外壁表面形態を達成し得る。最後に、ポリマーおよび凝集剤溶液の組成および温度を変化させ、所望の外壁表面形態を達成し得る。例えば、キャスティング溶液は、ＤＭＳＯ （ｗ／ｗ）中の１０〜１５％ ＰＡＮ／ＰＶＣであり得、そして凝集剤は水、またはその他の水性媒体であり得る。あるいは、キャスティング溶液は、例えば、１６％ ＰＡＮ／ＰＶＣであり得、そして凝集剤は、例えば２３℃で４０％ ＮＭＰ、６０％ Ｈ２Ｏであり得る。
【００９２】
カプセルをシールするいずれの適切な方法も用いられ得、この方法は、ポリマー接着剤および／またはクリンピング（ｃｒｉｍｐｉｎｇ）、節止め（ｋｎｏｔｔｉｎｇ）およびヒートシールの使用を含む。これらのシール技術は当該分野において公知である。さらに、いずれの適切な「乾燥」シール方法も使用し得る。このような方法においては、実質的に無孔性のフィッティング（ｆｉｔｔｉｎｇ）が提供され、これにより細胞含有溶液が導入される。充填に続いて、カプセルがシールされる。このような方法は、本明細書中に参考として援用されている、同時係属中の米国特許出願第０８／０８２，４０７号に記載されている。
【００９３】
本発明の方法およびデバイスは、哺乳動物の宿主、レシピエント、被検体、または個体、好ましくは霊長類、最も好ましくはヒトにおける使用が意図される。
【００９４】
本発明のデバイスおよび方法に関して、多くの異なる移植部位が意図される。これらの移植部位は、脳、脊髄を含む中枢神経系、ならびに眼の眼房水および硝子体液を含む。脳内の好ましい部位は、線条体体、大脳皮質、視床下核、およびＭａｙｎｅｒｔ基底核を含む。他の好ましい部位は、脳脊髄液であり、最も好ましくは、くも膜下腔および側脳室である。本発明はまた、腎被膜下部位、ならびに腹腔内部位および皮下部位、または他の任意の治療的に有益な部位への移植を意図する。
【００９５】
本発明の実施態様において、神経の変性によって引き起こされる疾患の処置のための方法が提供される。神経の変性に関連すると考えられるヒト疾患の例としては、アルツハイマー病、ハンチントン病、ＡＩＤＳ関連痴呆、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、およびパーキンソン病が挙げられる。
【００９６】
神経変性状態のいくつかの動物モデルは、特定の傷害がニューロンを損傷または死滅し得るという前提に基づいている。いくつかの場合において、このことは、ニューロン死のカスケードを引き起こし得、特定の脳機能を担う経路に沿った栄養的に相互独立したニューロンに影響する。
【００９７】
神経変性状態の処置のためのストラテジーは、
（１）シナプス後ニューロンに対するさらなる損傷を阻害し、そして
（２）傷害を受けた細胞の生存能を改善するために、
成長因子または栄養因子の局所投与を包含する。ニューロンの生存能を改善することが知られている因子としては、ＮＧＦ、ＢＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４／５、ＣＮＴＦ、ＧＤＮＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦ、ｂＦＧＦ、ａＦＧＦ、ＩＧＦ、ニューロテンシン、およびサブスタンス−Ｐが挙げられる。
【００９８】
神経変性興奮性毒性（ｅｘｃｉｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）に対する動物モデルにおいて、グルタミン酸アナログであるキノリン酸を、線条体体および／または基底核と知られる脳領域内に定位的に注入してハンチントン病を患う患者の神経病理および徴候と類似の神経病理および徴候を生じさせる。モデルおよび実際のハンチントン病の両者は、運動制御の局面に必要なニューロンに対する傷害によって特徴付けられる。さらに、ハンチントン病の初期の徴候の一つは、体重の減少である（Ｓａｎｂｅｒｇら Ｍｅｄ Ｊ Ａｕｓｔ．、１、４０７〜４０９頁（１９８１））。同様の効果がモデル系においても認められる（Ｓａｎｂｅｒｇら Ｅｘｐ Ｎｅｕｒｏｌ、６６、４４４〜４６６頁（１９７９））。キノリン酸はまた、ＡＩＤＳ関連痴呆を患うヒトにおいて異常に高いレベルで見出される。
【００９９】
ハンチントン病（ＨＤ）は、奇異な制御不能な運動および異常な姿勢を伴う進行性の痴呆により特徴付けられる常染色体優性疾患である。ＨＤは、ほぼ全ての民族および人種のグループに見出され、米国での罹患率は約５０／１，０００，０００である（Ｅｍｅｒｉｃｈ， Ｄ．Ｆ．およびＳａｎｂｅｒｇ， Ｎｅｕｒｏｍｅｔｈｏｄｓ、２１、６５〜１３４頁（１９９２））。本疾患の症状出現は、代表的には、中年（約３５〜４５歳）において生じ、続いて精神的低下および進行性の運動異常の難治性の経過をたどり、通常１５年以内に死を招く。ＨＤの神経病理学的研究により、関連し、そして相互に独立した神経化学的および組織病理学的変異の複雑なモザイクが示されている。
【０１００】
ＨＤの動物モデルを開発するために、種々の手段が検討されている。最近の研究は、選択的細胞毒性化合物の使用から起こる線条体体損傷と歩行運動異常との間の関係に集中している。グルタミン酸は、ＣＮＳに見出される主要な興奮性神経伝達物質の一つである。しかし、それは強力な神経毒として作用し、そしてグルタミン酸およびその他の興奮性毒性化合物の比較的特異的な細胞毒性効果に基づくＨＤの動物モデルを開発するために、多くの試みが成されている。これらの化合物として、カイニン酸（ＫＡ）、イボテン酸（ＩＡ）、および内因性トリプトファン代謝物であるキノリン酸（ＱＡ）のようなグルタミン酸の構造的アナログが挙げられる。極少量をラットの脳内に注入すると、これらの化合物は、通過線維の軸索および求心性神経終末は残す一方で、著しくかつ局所的に限定された毒性効果を生産じる。興奮性毒性の行動的、神経化学的、および解剖学的結果は、ＨＤにおいて観察された結果と類似し、そして内因性興奮性毒性化合物の異常な過剰生産または分解が、ＨＤの病因論的要因であるという推測が導き出された。
【０１０１】
キノリン酸（２，３−ピリジンジカルボン酸でトリプトファンの代謝物）は、その強力な興奮性毒性特性ならびにラットおよびヒト脳の両方における幅広い分布の故に大いに注目されている（ＳｃｈｗａｒｃｚおよびＫｏｈｌｅｒ、Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｌｅｔｔ．、３８、８５〜９０頁（１９８３）；およびＳｃｈｗａｒｃｚら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２１９、３１６〜３１８頁（１９８３））。高濃度の異化酵素（キノリン酸ホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＱＰＲＴ））および直接の同化酵素（３−ヒドロキシアントラニル酸（３ＨＡＯ）が、尾状核（ｃａｕｄａｔｅ）内に検出されたことから、これは、通常、線条体体の機能において役割を果たすことが示唆される（Ｆｏｓｔｅｒら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．、３３６、２０７〜２１４頁（１９８５））。線条体体は、ＱＡの興奮性毒性効果に対して最も脆弱な構造にあり（ＳｃｈｗａｒｃｚおよびＫｏｈｌｅｒ、（１９８３）、前出）、そして新生の（成熟ではない）動物は、ＱＡの毒性効果に耐性であるようである。このことは中年における代表的なＨＤの発症におおよそ対応する。
【０１０２】
キノリン酸は、線条体体においてＫＡよりも選択的な変性効果を発揮すると報告されている。ＫＡは、ＨＤの病理をより厳密にまねる（Ｂｅａｌ、Ｓｙｎａｐｓｅ、３、３８〜４７頁（１９８９）；およびＲｏｂｅｒｔｓおよびＤｉＦｉｇｌｉａ、Ｓｙｎａｐｓｅ、３、３６３〜３７１頁（１９８９））。ＫＡと同様、ＱＡの注入によりＧＡＢＡ感受性ニューロンの涸渇が生じ、一方、コリン作動性ニューロンおよび外部起始の軸索を相対的に残す。ＫＡまたはＩＡとは異なり、ＱＡの線条体体内注入は、ソマトスタチン含有およびニューロペプチドＹ含有ニューロンを残すようであることから、このモデルは、本疾患において観察される神経病理を最も厳密に再生することが示唆される（Ｂｅａｌら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏ Ｓｃｉ、８、３９０１〜３９０８頁（１９８８）。
【０１０３】
本発明に従って、細胞（適切な因子を分泌する遺伝的に改変した細胞を含む）を含有するカプセルを移植することによって、適切な脳の領域に栄養因子が提供される。ある場合において、遺伝的に改変した細胞は宿主に対して自己由来（ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ）であり、そしてカプセル化を必要としない。
【０１０４】
ヒトＮＧＦを発現するように操作されているＢＨＫ細胞のような神経成長因子分泌細胞は、キノリン酸誘導性神経変性に対する療法の典型示す。
【０１０５】
別の動物モデルでは、采−脳弓（齧歯類）または脳弓（霊長類）の傷害を包含する。詳細には、中隔海馬系のニューロンを軸索切断して、中隔コリン作動性ニューロンのＮＧＦ−依存変性および細胞死を起こす。これらの傷害は、ヒトのアルツハイマー病において影響されるのと同様の脳領域で変性変化を起こす。
【０１０６】
本発明の方法に従って、ＮＧＦを分泌する遺伝的に改変した細胞を含むカプセルの移植によって、ＮＧＦが影響された領域に送達され得る。ＣＮＴＦ、ＢＤＮＦ、ｂＦＧＦ、ＣＤＦ／ＬＩＦのような他の神経栄養因子もまた、中隔コリン作動性ニューロンの同様な集団または重複しない集団を萎縮および／または死から保護し得る。好ましくは、細胞は、組換えヒトＮＧＦを産生するように遺伝子的に操作された線維芽細胞である。
【０１０７】
脳弓の傷害もまた、動物被検体のモデルにおいて行動上の欠損（学習および記憶に関する作業課題（ｔａｓｋ）において最も容易に観察される）を引き起こす。采−脳弓の傷害を伴うラットへのＮＧＦの慢性投与により動物の行動の回復が促進されることが報告されている（Ｗｉｌｌｓら Ｂｅｈａｖ． Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．、１７、１７〜２４頁（１９８５））。本発明において、ＮＧＦ分泌細胞を含むポリマーカプセルの移植は、障害を受けた動物の適切な脳領域に継続的にＮＧＦを送達する実際的な方法を提供する。本発明のカプセルは、病態が特定の脳領域へのＮＧＦの継続的な送達によって改善され得るアルツハイマー患者に対する治療および／または予防処置の実際的な形態を提供する。
【０１０８】
本発明の方法および組成物は、神経変性から生じる、年齢に関連した認識性欠損の処置に用いられ得る。このような処置は、認識パフォーマンスを増大し得、従って徴候的な利益を提供する。あるいは、処置は徴候的な利益はないものの、神経保護効果を提供し得る。ヒトにおける年齢に関連した認識機能不全および痴呆は、ニューロン変性、特にコリン作動性基底前脳ニューロンのニューロン変性、ならびに皮質および海馬のＣｈＡＴのレベルの低下に関連付けられている（Ｃｏｙｌｅら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２１９、１１８４〜９０頁（１９８３）；Ｗｈｉｔｅｈｏｕｓｅら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２１５、１２３７〜３９頁（１９８２）；Ｐｈｅｌｐｓら、Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ． Ａｇｉｎｇ、１０、２０５〜０７頁（１９８９）；Ｇａｇｅら、Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ． Ａｇｉｎｇ、９、６４５〜５５頁（１９８８））。コリン作動性基底前脳ニューロンを選択的に破壊することによって痴呆の齧歯類モデルを作成する試みの前臨床研究では、広範で持続的な認識機能の欠損を生じさせることに失敗した。老齢ラットは、老齢かつ痴呆の患者において報告された神経病理と同様の神経病理を示す。Ｍｏｒｒｉｓ水迷路による空間学習は、これらの病理学的プロセスの有害な効果に極めて敏感である（Ｍｏｒｒｉｓ、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｍｅｔｈ．、１１、４７〜６０頁（１９８４）；Ｍｏｒｒｉｓ、Ｌｅａｒｎｉｎｇ ａｎｄ Ｍｏｔｉｖａｔｉｏｎ、１２、２３９〜６０頁（１９８１））。この作業課題は、年齢に関連した認識機能の尺度として妥当化されている。この作業課題における老齢ラットのパフォーマンスは、それらの運動、感覚運動または視覚の欠損、学習および記憶に関する他の試験を混同させる要因とは強くは関連していない（Ｇａｍｚｕ、Ａｎｎ． ＮＹ Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．、４４４、３７０〜９３頁（１９８５））。
【０１０９】
空間地図の発達が要求される認識作業課題（Ｅｉｃｈｅｎｂａｕｍら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．、１０、３５３１〜４２頁（１９９０））として、Ｍｏｒｒｉｓ水迷路は、臨床的設定における老化および痴呆傾向の障害に対して特に敏感な認識機能の非言語試験に類似すると思われる。従って、この作業課題は、痴呆の潜在的な新しい処置の評価に有効と思われる。例えば、いくつかの研究は、外因性ＮＧＦが老齢および学習障害ラットにおけるＭｏｒｒｉｓ水迷路のパフォーマンスを改善すると報告している。例えば、Ｆｉｓｃｈｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ、３２９、６５〜６８頁（１９８７）；Ｆｉｓｃｈｅｒら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．、１１、１８８９〜１９０６頁（１９９１）を参照のこと。
【０１１０】
ＮＧＦは、容易には脳血液関門を横切らないため、そのＣＮＳへの投与には、血液脳関門の完全性を弱める侵入手順の使用を要する。例えば、外因性ＮＧＦの潜在的有効性を示した齧歯類の前臨床試験においては、ＮＧＦは浸透圧ミニポンプで、または慢性脳室内カニューレによって投与された。これらの技術は、カニューレによる注射またはポンプ（これは、リザーバーが涸渇するごとに交換しなければならない）からのいずれかによる脳内への反復注入を要する。ポンプリザーバーを取り替え、または注射シリンジをカニューレにより再挿入しなければならないが、そのたびごとに混入物が特に感染を受けやすい脳内に導入され得る、別の機会があることを示す。
【０１１１】
滅菌手順を注意深く使用しても、感染の危険は存在する。集中治療室においてでさえ、頭蓋内圧をモニターするために使用する脳室内カテーテルが、約３日後に細菌に感染する（Ｓａｆｆｒａｎ、Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、３５、４７１〜８６頁（１９９２）。感染の危険性に加えて、注入手順に関連するいくつかの危険があると思われる。脳室への注入は水頭症を生じることが報告されており（Ｓａｆｆｒａｎら、Ｂｒａｉｎ Ｒｒｅｓｅａｒｃｈ、４９２、２４５〜２５４頁（１９８９））、そして実質内への溶液の連続注入は壊死に関連している。
【０１１２】
胎児組織の使用は倫理的関心から明瞭にされておらず、そして非カプセル化非胎児細胞は拒絶されるか、または腫瘍を生じ得る。さらに、胎児供給源（ｆａｔａｌ ｓｏｕｒｃｅ）から採取した組織は、高い生存能があり得る。ＮＧＦ産生細胞をカプセル化することによって、比較的低い感染の危険性で、胎児組織を使用することなく、そして組織拒絶または腫瘍発生の危険性無く、外因性ＮＧＦが供給され得る。
【０１１３】
最後に、既に使用されている用量での外因性ＮＧＦが、それ自体で有害または毒性であるかどうかについての懸念が表明されており、おそらくアルツハイマー病に関連する神経変性のプロセスを促進さえすると思われる（Ｓａｆｆｒａｎ、Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、３５、４７１〜８６頁（１９９２）。外因性ＮＧＦは、もつれ形成（ｔａｎｇｌｅ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ）を促進し、脳血流の変化を潜在的に招く血管周囲の交感神経軸索の軸索発芽を開始させ、あるいはまだ影響を受けていない基底前脳ニューロンは機能不全となり、従って、痴呆のプロセスが促進されるような外因性ＮＧＦに応答する基底前脳ニューロンの投射をリモデリングする。（Ｓａｆｆｒａｎ、Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、３５、４７１〜８６頁（１９９２））。
【０１１４】
本発明の１つの局面によると、年齢に関連した認識性の欠損（ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー病、およびＡＬＳを含む）の処置のための外因性ＮＧＦの有益な効果は、外因性ｈＮＧＦ送達に効果的であると既に報告されている用量よりもかなり低い用量で得られる。
【０１１５】
既に報告された用量のＮＧＦの投与は、所望しない副作用を有し得る。それらには、著しい体重の減少、疼痛、意気消失、低食症（ｈｙｐｏｐｈａｇｉａ）およびヘルペス感染症の再発が含まれる。
【０１１６】
本発明によると、（インビボで合成された）ＮＧＦの脳室、脳実質、または他の適切なＣＮＳの場所へのカプセル送達（１〜１５００ｎｇ／日の範囲）が望ましい。ＮＧＦまたは他の適切な因子の実際の用量は、より少ないまたはより多い数のカプセルを移植することによって変化し得る。本発明者らは、脳室への送達については、１〜１５００ｎｇ ＮＧＦ／ヒト／日、好ましくは１０〜６００ｎｇ ＮＧＦ／ヒト／日、最も好ましくは５０〜５００ｎｇ ＮＧＦ／ヒト／日、そして実質への送達については１〜１５００ｎｇ ＮＧＦ／ヒト／日、好ましくは１０〜１５０ｎｇ ＮＧＦ／ヒト／日を意図する。これらの用量の範囲は、特に、用量を齧歯類、霊長類、およびヒト間の脳容積の差を考慮して規格化すると、齧歯類の研究および霊長類の研究においてＣＢＦニューロンのスペアリング（ｓｐａｒｉｎｇ）／発芽（ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ）に必要なＮＧＦの既に報告された用量（１７〜３５０μｇ／日）よりもかなり低い。Ｔｕｚｙｎｓｋｉら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．、１０、３６０４〜１４頁（１９９０）；Ｋｏｌｉａｔｓｏｓら、Ａｎｎ． Ｎｅｕｒｏｌ．、３０、８３１〜８４０頁（１９９１）、Ｋｏｌｉａｔｓｏｓら、Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｎｅｕｒｏｌ．、１１２、１６１〜７３頁（１９９１）；Ｄｅｋｋｅｒら、Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ、６０、２９９〜３０９頁（１９９４）。評価された１例の臨床患者においては、送達されたＮＧＦの用量は７５μｇ／日であった。（Ｏｌｓｏｎら、Ｊ． Ｎｅｕｒａｌ Ｔｒａｎｓ．、４、７９〜９５頁（１９９２））。１つの実施態様において、ヒトＮＧＦ （ｈＮＧＦ）を分泌する遺伝的に改変された細胞を半透過性膜内にカプセル化し、そして適切な哺乳動物宿主、好ましくは霊長類、最も好ましくはヒトの脳室内または実質内に移植する。
【０１１７】
本発明をさらによく理解するために、以下の実施例を示す。これらの実施例は例示のみを目的とするものであって、そして如何なる様式によっても、本発明の範囲を限定するように解釈してはならない。
【実施例】
【０１１８】
（実施例１：成体ラットのＣＮＳに移植するカプセル化ＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞
ヒトβ−ＮＧＦの発現およびＢＨＫ細胞株の生産）
プレ−プロ形態のＮＧＦの完全なアミノ酸配列をコードするβ−ＮＧＦのヒト遺伝子を、ＳＶ４０プロモーターにより操作される変異形態のジヒドロ葉酸レダクターゼ（例えば、Ｋａｕｆｍａｎの米国特許第４，４７０，４６１号を参照のこと）を含む発現構築物中のマウスメタロチオネインプロモーターの後に、サブクローニングした（図１）。
【０１１９】
β−ＮＧＦ遺伝子の５’末端および３’末端をコードする２つのヒトゲノムクローンをＡＴＣＣから購入した（ｐｈｂｅｔａ Ｎ８Ｄ８、ｐｈｂｅｔａ Ｎ８Ｂ９）。ｐｈｂｅｔａ Ｎ８Ｄ８由来の４４０ｂｐのＳｃａ１−ＥｃｏＲ１フラグメントの５’側を、ｐｈｂｅｔａ Ｎ８Ｂ９から単離した２．０ｋｂのＥｃｏＲ１フラグメントの３’側に連結した。スプライシングしたＮＧＦゲノム配列は、第１イントロンの３’末端の約３７ｂｐ、プレ−プロＮＧＦのタンパク質翻訳を開始すると考えられる２重のＡＴＧ配列、ならびにヒト遺伝子の完全なコーディング配列および３’側の非翻訳領域全体を含んでいた（Ｈｏｙｌｅら、Ｎｅｕｒｏｎ １０， ｐｐ．１０１９−１０３４ （１９９３））。２．５１ｋｂの結合したβ−ＮＧＦ構築物を、 ｐＮＵＴ発現ベクターを基にしたＤＨＦＲ（Ｂａｅｔｇｅら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８３， ｐｐ．５４５４−５４５８ （１９８６））のマウスメタロチオネイン−Ｉプロモーター（−６５０〜＋７）およびラットインスリンＩＩ遺伝子（Ｐａｌｍｉｔｅｒ Ｒ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８８， ｐｐ．４７８−４８２ （１９９１））の第１イントロンの直ぐ下流にサブクローニングした。ｐＮＵＴ−β−ＮＧＦ構築物（図１を参照のこと）を、標準的なリン酸カルシウム介在トランスフェクション方法を用いて、ＢＨＫ細胞に導入した。トランスフェクトしたＢＨＫ細胞を、２００μＭメトトレキセート（Ｓｉｇｍａ）を含有する培地で３〜４週間選択し、そして耐性の細胞を、２００μＭメトトキセレートとともにまたは含まないのいずれかでポリクローナル集団として維持した。
【０１２０】
（ＮＧＦ生物活性の定量）
神経成長因子（ＮＧＦ）は、ＰＣ１２細胞で神経突起の顕著な伸長を引き起こし、そしてそれ自身が、ＮＧＦ生物活性について迅速かつ感度の良いアッセイを提供する。ＮＧＦトランスフェクトしたＢＨＫ細胞により生産されたＮＧＦの生物活性を試験するために、親ＢＨＫ細胞（ＢＨＫ−コントロール）およびＢＨＫ−ＮＧＦ細胞由来のならし培地（ＣＭ）を、６ウエルの標準組織培養プレートで生育したＰＣ１２Ａ細胞（ＳｃｈｗｅｉｔｚｅｒおよびＫｅｌｌｙ， Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．， １０１， ｐｐ．６６７−６７６ （１９８５））に添加した。コントロールとして、２５ＳのマウスＮＧＦをいくつかのウエルに添加し、神経突起を誘導した（５０ｎｇ／ｍｌ）。 ＰＣ１２Ａ細胞を、１〜４日間にわたり細胞体の直径の長さを３回以上測定した神経突起について記録した。ＮＧＦバイオアッセイはまた、移植したコントロールカプセルおよびＮＧＦ分泌性ＢＨＫ細胞充填カプセルの修復に基づき、カプセル由来のＣＭを新鮮な培地で２４時間インキュベートしたカプセルから取り出した純粋なＰＣ１２Ａ細胞に添加することにより行った。全ての実験では、ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞由来のＣＭは、２４時間以内にＰＣ１２Ａ細胞で丈夫な神経突起伸長を生じ、このことはＢＨＫ細胞から生産されたＮＧＦが生物活性であることを示す。ＢＨＫコントロールは、並行した実験でＰＣ１２Ａ細胞の神経突起伸長を起こすこのような能力を示さなかった。
【０１２１】
神経突起伸長がｂＦＧＦのようなＮＧＦ以外の因子によるかどうかを決定するために、本発明者らは、ＣＭおよび組換えｈＮＧＦを組合せてＮＧＦブロック抗体（マウス抗β−ＮＧＦ；Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍカタログ番号１００８−２２０）を添加した。このブロック抗体の添加は、用量依存様式でＰＣ１２Ａ細胞由来の神経突起伸長を十分に阻害した。最後に、本発明者らは、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）の存在について、ＥＬＩＳＡによりＢＨＫコントロール細胞のならし培地をプロービングする１組の実験を行った。ｂＦＧＦ ＥＬＩＳＡ（Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｓｙｓｔｅｍｓ， ＱｕａｎｔｉｋｉｎｅＴＭ， ヒトＦＧＦ塩基性ＥＬＩＳＡキット；Ｂｕｒｇｅｓｓら、Ａｎｎ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ， ５８， ｐ．５７５（１９８９））を用いると、本発明者らは、ＢＨＫ細胞由来の多量のならし培地中の任意のｂＦＧＦを検出し得なかった。これら両方の実験は、ＢＨＫ−ＮＧＦ ＣＭに応じてＰＣ１２Ａ細胞で見られる神経突起伸長が分泌ＮＧＦの存在によることを明らかに示す。
【０１２２】
（ＮＧＦ ＥＬＩＳＡ）
カプセル化および非カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞由来のＮＧＦ発現の定量を以下のように行った：全ての試薬は、他の記載がない場合、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓから入手した。Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ ＭａｘｉＳｏｒｐ ＥＬＩＳＡプレートを、コート緩衝液（ＣＡＣｌ２およびＭｇＣｌ２／０．１％アジ化ナトリウムを含有しない１×ＰＢＳ；ｐＨ９．６）中、１ｎｇ／ｍｌの抗マウス−β（２．５Ｓ）神経成長因子を１ウエルにつき１５０μｌでコートした。コートしたプレートを、３７℃で少なくとも２時間、あるいは４℃で一晩インキュベートした。コート溶液をウエルから回収し、そしてウエルを３００μｌの洗浄緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ／２００ｍＭ ＮａＣｌ／１０ｍＭ ＣａＣｌ２／１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００／０．１％アジ化ナトリウム；ｐＨ７．０）で、３回洗浄した。次いで、ウエルを１０ｍｇ／ｍｌのウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含む３００μｌのコート溶液で、室温にて少なくとも３０分間ブロックした。次いで、ウエルを３００μｌ洗浄液で３回洗浄した。ならし培地のサンプルを、２×サンプル緩衝液（サンプル緩衝液は、２％ ＢＳＡ含有すること以外洗浄緩衝液と同じである）中に１：１希釈した。１００μｌの調製サンプルを、ウエルに充填した。プレートを覆い、次いで３７℃で少なくとも２時間または４℃で一晩インキュベートした。溶液を、吸引によりウエルから除去し、そして３００μｌの洗浄緩衝液で３回洗浄した。各ウエルに、４Ｕ／ｍｌの抗マウス−β（２．５Ｓ）神経成長因子−β−ｇａｌ結合体を１００μｌ添加した。プレートを少なくとも１時間３７℃でインキュベートした。溶液を吸引によりウエルから除去し、３００μｌの洗浄緩衝液で３回洗浄した。最後に、２００μｌのクロロフェノールレッド−β−Ｄ−ガラクトピラノシド基質溶液（１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／２ｍＭ ＭｇＣｌ２／０．１％アジ化ナトリウム／１％ ＢＳＡ中４０ｍｇ ＣＰＲＧ；ｐＨ７．０）をウエルに添加し、そして３７℃でインキュベートした。約３０分〜１時間後または発色が５７０ｎｍでの光度測定に十分になった後、サンプルをプレートリーダー上で分析し、そして組換えＮＧＦタンパク質標準に対して測定した。
【０１２３】
（ｃ−ｆｏｓ誘導アッセイ）
ＰＣ１２Ａ細胞へのＮＧＦ投与により起こる定量的なｃ−ｆｏｓ誘導を、免疫蛍光アッセイにより測定した。ＰＣ１２Ａ細胞を、１ｍｌにつき１００，０００細胞の密度で、ポリオルニチン処理したガラスカバーグラス（１２ｍｍ）上に播き、そして２４ウエルプレートで少なくとも２４時間平衡化した。細胞を、神経突起伸長バイオアッセイのセクションにすでに記載したように、同じ培地中で増殖した。
【０１２４】
ＰＣ１２Ａ細胞におけるｃ−ｆｏｓ誘導について試験するために、ＢＨＫおよびＢＨＫ−ＮＧＦ細胞、または組換えヒトＮＧＦ（５０ｎｇ／ｍｌ）を含有するカプセル由来のならし培地を、ＰＣ１２Ａ細胞に２時間添加し、そして３７℃かつ５％ ＣＯ２でインキュベートした。このインキュベーションの後、カバーグラスを４％パラホルムアルデヒド（０．１Ｍ ＰＢＳ、ｐＨ７．４中）で固定し、ＰＢＳ中の１０ｍＭグリシンで２回洗浄し、１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ１００（ＰＢＳ中１０分間）および１％ ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０（ＰＢＳ中１０分間）で透過した。カバーグラス上の細胞をＰＢＳで５分間の洗浄を３回行い、ＰＢＳ中の５％正常ヤギ血清（ＮＧＳ）で１時間ブロックし、そしてＰＢＳ中１％ ＮＧＳで１：１０希釈したｃ−ｆｏｓに対して生じたウサギポリクローナル抗血清（Ｏｎｃｏｇｅｎｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ）中で３時間インキュベートした。次いで、カバーグラスをＰＢＳで５分間の洗浄を２回行い、そしてフルオレセイン結合ヤギ抗ウサギＩｇＧ抗体とともにインキュベートした。最後に、カバーグラスをＰＢＳで２回洗浄し、そしてＣｉｔｉｆｌｕｏｒＲアンチフェーデント（ａｎｔｉｆａｄｅｎｔ）で固定し、そして蛍光顕微鏡で観察した。蛍光を顕微鏡によりモニターし、そしてｃ−ｆｏｓ誘導を、蛍光標識した核の存在により測定した。
【０１２５】
（カプセル化の手順）
不均斉な単一皮膚中空ファイバーを、ジメチルスルホキシド中１２．５％ポリ（アクリロニトリル塩化ビニル、すなわちＰＡＮ−ＰＶＣ）コポリマー（ｗ／ｗ）の溶液からキャストした。製造プロセスは、Ｃａｂａｓｓｏ、Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， １２， ｐｐ．４９２−５１７（１９８０）によりドライーウエット（ジェット）スピニング技法を用いる相転位として公知である。スピニングプロセス後、中空ファイバーを、２５％グリセロールを含有する蒸留水浴に無菌的に移した。このことは、乾燥手順の間に完全なポアを維持する方法を提供する（Ｃａｂａｓｓｏ， １９８０， 前出）。製造したファイバー（ＸＰ１１）は、４５０±２５μｍの内径、５３ｍｌ／（ｍ２分ｍｍＨｇ）の液浸透性、８８．７±２．１％のＢＳＡ排除係数、８２．０±１．７％のオボアルブミン排除係数、および約８×１０−４ｃｍ／秒のグルコース質量移動係数を有するＴ１／２膜タイプであった。乾燥後、デバイスを、６〜７ｍｍの長さの乾燥中空ファイバーを遠位のシールで、近位末端に中隔定着物を有する光硬化アクリレートハブ上にマウントすることにより製造した。近位末端は、デバイスの内腔に注入される細胞のための充填アクセスを有する。グリセロールを、濾過滅菌した７０％エタノールでデバイスから除去し、そしてカプセル化を行う前にＨＢＳＳ中に入れた。
【０１２６】
細胞を以下のように予め製造したカプセル化デバイスに充填した：ＢＨＫコントロール細胞またはＢＨＫ−ＮＧＦ細胞のいずれかを、約１０７／ｍｌの密度で予め製造したデバイスに充填した。２×１０７／ｍｌの密度のＢＨＫ細胞懸濁液を、生理学的ＶｉｔｒｏｇｅｎＲ（Ｃｅｌｔｒｉｘ， Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ， ＣＡ）と１：１で混合し、そして中隔アクセスポートから予め製造したデバイスに注入した。２〜２．５μｌの細胞懸濁液を注入後、中隔を破り、そしてアクセスポートを光硬化アクリレート（Ｚｅｎｅｃａ）を用いてシールした。ＢＨＫ細胞充填デバイスを、移植前に、無血清培地であるＰＣ１（Ｈｙｃｏｒ）で４〜５日間維持した。インビトロで３または４日後、細胞を充填したカプセルをＨＢＳＳで２回洗浄し、そして１ｍｌの新鮮な培地に入れ、ＥＬＩＳＡによりＮＧＦについて分析した。
【０１２７】
（成体ラットＣＮＳにおけるβ−ＮＧＦの長期発現）
本発明者らのインビトロでの実験は、ＢＨＫ細胞でのヒトβ−ＮＧＦの長期で安定な高レベルの発現を示した。この長期で安定な発現がインビボで達成され得るかどうかを決定するために、本発明者らは、ＢＨＫ細胞を含有するカプセルを成体ＬｅｗｉｓラットのＣＮＳに移植した。
【０１２８】
移植前に、ＢＨＫ−ＮＧＦカプセルおよびＢＨＫコントロールカプセルから採取したならし培地（ＣＭ）を、上記のようにＮＧＦについて神経突起伸長アッセイに供した。ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞由来の０．５ｍｌのＣＭは、神経突起伸長の程度について、５０ｎｇ／ｍｌの外因的に添加したＮＧＦと同等であったが、ＢＨＫコントロール細胞由来のＣＭは、検出可能なレベルのＮＧＦを含んでいなかった。
【０１２９】
カプセルを、成体Ｌｅｗｉｓラットの線状体に１、３、および６カ月間移植した。上記の説明に基づき、カプセルを、神経突起伸長アッセイによりＮＧＦの生産について試験した。
【０１３０】
インビボで１、３、および６カ月後、ＢＨＫ−ＮＧＦを充填したカプセルは、５０ｎｇ／ｍｌのＮＧＦと同等またはより大きいＰＣ１２Ａ細胞で神経突起伸長を生じ得た。ＮＧＦ活性は、ＢＨＫコントロールカプセル由来のＣＭで検出できなかった。表Ｉに示すように、カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞由来のサンプルのＥＬＩＳＡ定量は、３および６カ月後のインビボにおいて、約２０ｎｇ／２４時間／カプセルまで放出した。
【０１３１】
【表１】
（実施例２：ラットにおける采−脳弓損傷の研究）
カプセル化ＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞（実施例１に記載のとおり）が、インビボで有効量のＮＧＦを放出する能力を評価するために、采−脳弓吸引性損傷（ａｓｐｉｒａｔｉｖｅ ｌｅｓｉｏｎ）を１４匹のＬｅｗｉｓラットで定位手術で行った。損傷の直後、実施例１に記載のように、ＢＨＫコントロールまたはＢＨＫ−ＮＧＦ充填ＸＰ−１１デバイスを損傷部位に定位手術で移植した。
【０１３２】
（被験体）
約３カ月齢であり、そして約３００グラムの体重の成体の雄Ｌｅｗｉｓラット（Ｈａｒｌａｎ Ｂｒｅｅｄｅｒｓ， Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ， ＩＮ）を以下の研究に用いた。動物を３つのグループで温度および湿度を制御したコロニー部屋で飼育し、その部屋は、０７００時に点灯する１２時間の明／暗サイクルで維持された。
【０１３３】
（定位手術）
手術の直前に、ラットを、ケタミン、キシラジン、およびアセプロマジン混合物の筋肉内注射で麻酔をかけ、そしてＫｏｐｆ定位手術器具（Ｅｍｅｒｉｃｈら、１９９２参照）に置いた。矢状切開を頭皮に行い、そしてブレグマから２．０ｍｍ後方に、そして３．０ｍｍ側方にわたり開頭手術を行った。２０ゲージのチップを有する吸引デバイスを、定位手術フレーム（Ｋｏｐｆ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）にマウントし、そして内壁皮質（ｍｅｄｉａｌ ｐａｒｉｅｔａｌ ｃｏｒｔｅｘ）、帯状皮質（ｃｉｎｇｕｌａｔｅ ｃｏｒｔｅｘ）、脳梁、海馬の背面、視床の背面、および采−脳弓を、ブルグマの１．４０ｍｍ後ろに吸引チップを置き、そして矢状洞の直ぐ側方に５．０ｍｍの深さまでそれを入れ込むことにより吸引した。次いで、ブレグマの３．０ｍｍ側方の位置に達するまで、チップを０．５ｍｍずつ側方に動かす。吸引直後に、定位フレームにマウントした１８ゲージのテフロン（登録商標）カテーテル内にカプセルを置くことにより、ラットに、トランスフェクト（Ｎ＝８）または非トランスフェクトＢＨＫ細胞含有カプセル（Ｎ＝６）のいずれかを片側に移植した。各デバイスは、直径６００ミクロンで長さ０．７ｃｍを測定し、そして約１５〜２５×１０３細胞を含んでいた。
【０１３４】
ステンレス鋼オブドュレーター（ｏｂｄｕｒａｔｏｒ）をカニューレ内に置き、外側のカニューレが予め調製された窩内にカプセルを無抵抗に置けるようになるまで、オブドュレーターをその場所に保持した。移植のための定位手術座標は、ブレグマより０．５ｍｍ後方、矢状縫合の１．０ｍｍ側方、および皮質表面より７．５ｍｍ下方であった。
【０１３５】
（組織学）
動物に手術後３週目に麻酔をかけ、そして組織学的分析用に調製した。動物を、以下のものでペリスタポンプを用いて、心臓を介して（ｔｒａｎｓｃａｒｄｉａｌｌｙ）灌流した：２０ｍｌ生理食塩水（０．９％、室温）、１２０ｍｌのグルタルアルデヒド（０．１％）、５００ｍｌの０．１％グルタルアルデヒド／４％パラホルムアルデヒド、３００ｍｌのパラホルムアルデヒド（４％）、および最後に３００ｍｌの１０％スクロース。全ての溶液を氷冷し（４℃）、そして他に記載がない場合、リン酸緩衝化生理食塩水中（ｐＨ＝７．４）で調製した。
【０１３６】
固定後、脳を取り出し、２５％緩衝化スクロース（ｐＨ＝７．４）に入れ、そして２４〜４８時間冷却した。組織を低温槽で２０μｍの間隔で切り、そしてポリリジンでコートしたスライドにマウントした。中隔全体を通しての３番目毎の切片を保存し、以下のプロトコールに従ってコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）免疫反応性について処理した：（１）０．８％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００＋１０％正常血清を含むＰＢＳ中で一晩インキュベーション、（２）１：１０００の希釈した一次抗体（ＣｈＡＴに対するヤギ抗血清；Ｃｈｅｍｉｃｏｎ）とともに４８時間インキュベーション、（３）ＰＢＳ＋０．２％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００で６×５分のすすぎ、続いて、ビオチン化二次抗体（ＩｇＧ）中で１．５時間インキュベーション、（４）ＰＢＳ＋０．２％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００中で６×５分のすすぎ、（５）１．５時間、アビジン−ビオチン結合体（ＡＢＣ、Ｖｅｃｔｏｒ ｅｌｉｔｅ）とともにインキュべーション、（６）ＰＢＳ中で３×５分のすすぎ、（７）蒸留水で５分のすすぎ、（８）０．１％ Ｔｒｉｓ緩衝液に溶解した３，３−ジアミノベンジジン（ＤＢＡ）（０．０５％）＋２％ニッケルアンモニウム硫酸塩とともに５分間インキュベーションし、続いて５分間過酸化水素（０．０１％）でインキュベーション、（９）反応をＰＢＳで３×１分のすすぎにより停止した。
【０１３７】
切片をマウントし、脱水し、そしてカバーグラスを載せた。隣接した切片をヘマトキシリンおよびエオシン（Ｈ＋Ｅ）で染色した。采−脳弓の吸引後に生じた損傷の広がりを確認するために、１０番目毎の切片を海馬全体を通して取り出し、そしてＶａｎ Ｏｏｔｅｇａｎら（Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ． Ｂｕｌｌ．， １２， ｐｐ．５４３−５５３（１９８４））の方法に従ってアセチルコリンエステラーゼについて染色した。コリン作動性細胞の損失を定量するために、ＣｈＡＴ陽性ニューロンを１０×の倍率で対角帯（ｄｉａｇｏｎａｌ ｂａｎｄ）の中隔の内側および鉛直肢（ｖｅｒｔｉｃａｌ ｌｉｍｂ）で計数した。各動物由来のブレグマから約０．７、０．５、および０．２ｍｍ前方に位置する代表的な切片（脳あたり３つ）をこの分析のために用いた。
【０１３８】
（ＮＧＦ放出の結果）
移植後３．５週後、動物を麻酔し、そしてデバイスをシリコーン鎖をゆっくりと引っ張ることにより回収した。各カプセルを、１ｍｌの培地で２４時間インキュベートし、そしてＣＭをＥＬＩＳＡによりＮＧＦについてアッセイした。移植の前および後のＮＧＦ分泌レベルを表ＩＩに掲げる。
【０１３９】
【表２】
全ての動物の海馬および中隔から採取した組織学的切片を、海馬ではアセチルコリンエステラーゼ（ＡｃｈＥ）、中隔ではコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）について免疫細胞化学により試験した。海馬でのＡｃｈＥ免疫反応性を、損傷の完全性の第二の指標として用い、そして中隔でのＣｈＡＴ免疫反応性は、移植および損傷の結果としてコリン作動性細胞体の減少または萎縮の証拠を提供した。海馬の損傷対コントロール部位のＡｃｈＥ免疫染色の代表的な比較では、損傷部位へ求心性のＡｃｈＥのほぼ完全な損失を示した。
【０１４０】
ＢＨＫコントロールおよびＢＨＫ−ＮＧＦ移植動物の損傷後３．５週の中隔に残っている総ＣｈＡＴ−陽性ニューロンを計数し、そして合わせた結果を図２に示す。ＣｈＡＴ−陽性ニューロンの定量は、ＢＨＫコントロールカプセルを用いると、非損傷側と比較して、１５±３％のみのニューロンが、脳の損傷側で陽性のままであり、一方、ＢＨＫ−ＮＧＦカプセルを用いると、９０±５％のコリン作動性ニューロンがＣｈＡＴについて免疫陽性であった。カプセル化細胞の生存は、ＢＨＫコントロールとＢＨＫ−ｈＮＧＦ細胞充填カプセルとの間で等しかった（データは示さず）。
【０１４１】
（実施例３：霊長類の脳弓損傷）
実施例２は、本発明のＢＨＫ細胞から成体ラットの采−脳弓損傷を有する側脳室へのｈＮＧＦの慢性送達が、損傷の結果死んでしまうであろう中隔内側のコリン作動性ニューロンを保護することを示した。同様の実験をヒト以外の霊長類で行ったことを本明細書に記載する。サル（Ｃｅｂｕｓ ａｐｅｌｌａ）の脳弓の損傷を起こさせることは、（ＫｏｒｄｏｗｅｒおよびＦｉａｎｄａｃａ， Ｊ． Ｃｏｍｐ． Ｎｅｕｒｏｌ．， ２９８， ｐｐ．４４３， （１９９０））に記載されている。
【０１４２】
成体カニクイザルを、これらの損傷実験で用いた。一側性損傷を完了した後、実施例１に記載されるように５個のＸＰ−１１カプセルデバイス（番号により同定される）を、中隔内側の、損傷に同側に近接する側脳室内に手で置いた。コントロールとして、いくつかの動物に、ＢＨＫコントロール細胞を充填したデバイスを移植した。移植手順に続いて、手術部位を閉じ、そして動物を回復させ、そして３．５週間綿密にモニターした。３．５週の生存期間に続き、番号を付けたカプセルを注意深く取り出し、そして標準細胞培養培地に入れ、そして次いで、移植前であるとして、ＮＧＦ放出についてＥＬＩＳＡにより再アッセイした（表ＩＩＩ）。次いで、動物をアルデヒド固定剤を灌流することにより屠殺し、そして脳を、組織化学および免疫組織化学手順のために切片にし処理した。
【０１４３】
【表３】
表ＩＩＩに示すデータは、２匹のＢＨＫ−ＮＧＦを移植したサルおよび１匹のコントロールのサルの分析を示す。同じ研究で追加の６匹の動物からのＮＧＦ放出データのその後の分析は、移植前までにカプセルにより生じたｈＮＧＦの平均レベルが、ＮＧＦ ＥＬＩＳＡにより測定されるように、回収したカプセルにおいて２１．４±２．０ｎｇ／カプセル／２４時間および８．５±１．２ｎｇ／カプセル／２４時間であることが明らかになった。各サルに５つのカプセルを移植したので、動物１匹につき生じたＮＧＦの総量は、移植前および移植後１カ月ではそれぞれ１０７ｎｇ／２４時間および４１．５ｎｇ／２４時間であった。ＢＨＫコントロールカプセルは、検出可能なｈＮＧＦを生産しなかった（２５ｐｇ ＮＧＦ／ｍｌまで感度のあるアッセイ）。
【０１４４】
動物は、直ぐに手術から回復し、そして実験の間生存していた。ＢＨＫ−ｈＮＧＦ含有カプセルを受けている動物は、嗜眠状態であり、手術後数日間減少した食欲を示した。これらの動物うち１匹はまた、複数の発作が手術後約２日で始まり、そして手術後５日以内におさまることを示した。このような合併症は、ＢＨＫコントロール細胞移植物を受けたいずれの動物にも示されず、そしてＢＨＫ−ｈＮＧＦ動物とＢＨＫコントロール動物との間の違いは、手術後の最初の１週間後では観察されなかった。
【０１４５】
ＢＨＫコントロール移植物を受けている１匹の動物のポリマーのカプセルを、インサイチュに残して置いた。全ての他のサルにおいては、ＢＨＫ細胞充填デバイスを、移植後２３〜２８日の側脳室から、カプセルに宿主組織がほとんど付着しないように回収した。
【０１４６】
カプセル取り出し時の視覚的観察に基づき、全てのカプセルを、側脳室内に位置させ、そして尾状核の頭および中隔外側の両方で隣接させた。全てのカプセルを完全に取り出し、いずれのカプセルもインサイチュまたは回収の手順のいずれかの間で壊れなかったことを証明した。細胞充填デバイスを１匹のＢＨＫコントロール動物にインサイチュで残したままにし、デバイスの位置を示し、そして宿主組織の応答を評価した。この動物および全ての他の動物におけるカプセルへの宿主の応答は最小であった。かなり少量の反応性グリアが存在し、これは、全て観察された場合、移植片−宿主の界面で外接した位置でのみ見られた。さらに、マクロファージのような他の非ニューロン細胞は、移植片の周辺領域内で観察されなかった。
【０１４７】
全てのサルは、損傷の同側の海馬内のアセチルコリンエステラーゼ含有線維の広い損失により示されるような、脳弓の完全な横断切開を示した。移植されていないか、またはＢＨＫコントロール（ＮＧＦ非分泌）細胞移植物を受けたかのいずれかであるコントロールのサルは、互いに異ならず、そしてコリンアセチルトランスフェラーゼおよびｐ７５ ＮＧＦレセプター（ＮＧＦｒ）−免疫反応性ニューロンの広い損失を、損傷の同側の対角帯の中隔内側（ＭＳ；それぞれ５３および５４％）および鉛直肢（ＶＬＤＢ；それぞれ２１および３０％）内で示した。対照的に、ＢＨＫ−ｈＮＧＦ細胞の移植物を受けたサルは、コリン作動性ニューロンのあまり大きくない損失のみを中隔（それぞれ１９および２０％）およびＶＬＤＢ（７％）内で示した。さらに、ｈＮＧＦ分泌細胞の移植物のみが、中隔内でコリン作動性線維の稠密伸長を誘導し、これは、移植部位に隣接する脳室の上衣内層に対して分岐した。回収したカプセルの試験は、検出可能なレベルのｈＮＧＦを、培養でＰＣ１２Ａ細胞を分化するために十分な濃度で生産する大量の細胞を示した。
【０１４８】
（実施例４： ハンチントン病動物モデルにおけるＢＨＫ−ＮＧＦ移植片の効果）
（Ａ．齧歯類）
（手術と移植）
手術の直前に、Ｌｅｗｉｓラットをペントバルビタールナトリウム（４５ｍｇ／ｋｇ， ｉ．ｐ．）で麻酔しＫｏｐｆ定位器に置いた。頭皮に矢状切開を施し、２ヶ所に穴をあけＮＧＦを分泌するＢＨＫ細胞を含有するＸＰ−１１ポリマー製カプセルを（実施例１に記載した様に）側脳室に設置した。ラットの片側あるいは両側の移植は定位枠に取り付けた１８ゲージのテフロン（登録商標）製カテーテル中にカプセルを入れ、それを適切な位置に低下させて行った。移植の定位座標は以下のとおりである：ブレグマ（Ｂｒｅｇｍａ）の０．５ ｍｍ前方、矢状縫合の１．５ ｍｍ側方、皮質表面の８．０ ｍｍ下方。
【０１４９】
約１週間後、動物を麻酔し、定位器に設置して２２５（片側）または１５０（両側）ｎｍｏｌのＱＡあるいはリン酸緩衝化生理食塩水を賦形剤として、線条体に以下の座標で片側に注射した： 脳表面から下方にＡＰ＝＋１．２ ｍｍ、ＭＬ＝±２．６ ｍｍ、ＤＶ＝５．５ ｍｍ。ＱＡを２Ｎ水酸化ナトリウムに溶解してｐＨ７．２のリン酸バッファーで希釈し、最終ｐＨを７．４、最終濃度を２２５ｎｍｏｌ／μｌとした。ＱＡの各線条体への注入は２８ゲージのハミルトンシリンジを用い５分間にわたって１μｌ量の条件で実施した。注射カニューレをその場所にさらに２分間放置し潅流の拡散を可能にした。この手順の結果３つの実験グループが形成された： １）キノリン酸のみ（ＱＡ）、２）キノリン酸 ＋ ＮＧＦ−分泌ＢＨＫ細胞（ＱＡ／ＮＧＦ）、および３）キノリン酸 ＋ ＮＧＦ非分泌ＢＨＫ細胞（ＱＡ／ＮＯＮ−ＮＧＦ）。手術後ただちに、動物に１０ ｍｌの乳酸化リンガー溶液を腹腔内注射した。手術後、動物はマッシュ飼料と水を自由摂取で飼育した。
【０１５０】
（行動試験）
（回旋行動：）
片側のキノリン酸注射後１０日目から、動物を、自動化されたデータ収集用にＩＢＭコンピューターを接続した自動化回旋計測器（Ｒｏｔｏｓｃａｎ， Ｏｍｎｉｔｅｃｈ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）中でのアポモルヒネ誘導回旋行動試験に供した。まず動物を５分間の慣らし期間のために試験チャンバーに置き、次いでアポモルヒネ（１．０ ｍｇ／ｋｇ、０．１％アスコルビン酸を含有する標準の生理食塩水中）を注射し、続く３０分間の間に試験した。アポモルヒネにより誘導された回旋行動の増感作用は、線条体の刺激毒性損傷の後で起こる。それゆえ、動物の試験は各セッションを３ないし４日の間隔を開けて４回実施した。回旋は完全な３６０度の同側の回旋で定義され、２方向間の正味の差として報告された。
【０１５１】
（自発的運動能力：）
手術前および両側ＱＡの３０日後に、それぞれの動物を自動化Ｄｉｇｉｓｃａｎ−１６ Ａｎｉｍａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ Ｍｏｎｉｔｏｒ Ｓｙｓｔｅｍ （Ｏｍｎｉｔｅｃｈ Ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ， Ｃｏｌｕｍｂｕｓ， Ｏｈｉｏ）の５個の開放場ボックス中の１個に入れ、１時間の試験期間中の運動能力を試験した。以下に示す行動変数を収集した：（１）水平活動（ＨＡ）：水平センサー中断の総数； （２）総距離（ＴＤ）：インチで表現した動物の移動距離；（３）移動回数（ＮＭ）：移動１回毎に増加するこのパラメーターは最後の中断から少なくとも１秒間分離された光線の遮断によって記録された；（４）移動時間（ＭＴ）：秒で表現した動物の移動に要した時間；（５）平均速度（ＡＳ）：ｃｍ／秒で表現した動物の移動の平均速度；（６）平均距離（ＡＤ）：インチで表現した動物が１回の移動発作中に移動した平均距離；（７）垂直活動（ＶＡ）：垂直センサーにおける光線中断の総数；（８） 垂直時間 （ＶＴ）：このパラメーターは動物が垂直センサーの光線を遮断する間に増加した；（９）垂直移動回数（ＶＭ）：これは少なくとも１秒間分離された垂直センサーの光線中断により増加する；（１０）常同症的移動数（ＮＳ）：このパラメーターは同じ光線が１秒間隔で繰り返し遮断されると増加した；（１１）常同症時間（ＳＣ）：常同症に費やされた時間の蓄積。
【０１５２】
（カタレプシー：）
運動活動試験１日後、動物にＤ１およびＤ２ドーパミンレセプターのアンタゴニストであるハロペリドールとＳＣＨ２３８８を投与した後、運動機能減少（カタレプシー）の試験を実施した。カタレプシーは、動物の後ろ足を台の上に置き、前足を台の上９．０ ｃｍの所に吊るした水平棒（直径０．６ｃｍ）に置く棒試験により測定した。動物に生じたカタレプシーの度合いは、自分自身を棒から引き離すのにそれぞれの動物がどれだけの時間を要したかで測定した。許容範囲は最高３００秒までとした。動物を３つの処置グループの１つにランダムに割り当て、ハロペリドール（１．０ ｍｇ／ｋｇ）、ＳＣＨ２３３８８（１．０ｍｇ／ｋｇ）あるいはコントロール賦形剤 （０．９％生理食塩水）のいずれかを注射した。棒試験は、薬物および／またはコントロール賦形剤の投与後１、２、３、および４時間後に再度実施した。すべての動物の試験は、各処理条件のもと３〜４日の間隔をおいて実施した。
【０１５３】
（結果）
すべての動物は、試験セッションの繰り返しの中でアポモルヒネに対する感受性を増した。図３に示す様に、ＱＡはアポモルヒネで誘導した回旋行動の顕著な増加を生じさせた。非ＮＧＦグループの動物は、ＱＡのみを受けた動物と差がなかった。しかし、ＱＡと同時にＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞を受けた動物は（表ＩＶ、ＱＡ 片側を参照のこと）すべての試験セッション期間の間、回旋行動の有意な減少を示した。
【０１５４】
片側ＱＡ後に見られた行動保護と一致して、動物は、ＱＡの両側注射により生じた活動亢進状態の減少を示した。ＱＡのみ、またはＱＡおよび非ＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞移植物を受けた動物（即ちＢＨＫコントロール）は、移植前のレベルの約１００〜３５０％の範囲で活動の増加を示した（図４）。対照的に、ＱＡと同時にＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞を受けた動物（表ＩＶ、ＱＡ 両側）は、非ＮＧＦ処理動物に比較して非常に減少した、移植前の値の約２５〜１５０％の範囲の行動レベルを示した。
【０１５５】
同様の行動保護パターンが、両側ＱＡ動物をカタレプシーについて試験した時にも見られた。ＱＡを単独で、あるいは非ＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞と組み合わせて受けた動物は、４時間の試験期間中、ハロペリドールとＳＣＨ２３３９０の後、約３０〜６０秒の継続時間の範囲のカタレプシー時間を示した（図５）。対照的に、ＱＡおよびＮＧＦ分泌ＢＨＫ細胞を受けた動物は、強いカタレプシー応答を、ハロペリドール（１８０〜２２０秒で）およびＳＣＨ２３３９０（１５０〜２２０秒で）の両方に対して示した。全体にまとめると、これらの結果より、ポリマーでカプセル化したＢＨＫ細胞の事前移植は、ＱＡの片側、両側いずれの注射後にも観察された行動結果を顕著に減少し得た。
【０１５６】
【表４】
（Ｂ．霊長類）
上記の研究を霊長類に拡張した。
【０１５７】
４匹のカニクイザル（ｃｙｎｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｍｏｎｋｅｙ）が、実施例１に記載した様にＸＰ−１１ポリマーでカプセル化したＢＨＫ−ｈＮＧＦ細胞の移植物を受けた。４匹のコントロールのサルは、ｈＮＧＦ構築物を欠く同じカプセル化ＢＨＫコントロール移植物を受けた。それぞれの動物において３個の移植物を尾状核の頭部に、そして３個の移植物を後方被殻に設置した。座標はＭＲＩガイダンスに基づいた。
【０１５８】
手術は標準的な手法を用いて実施した。サルは麻酔した。無菌条件化で、正中線に基づいたＵ字型の切開を行い、右側線条体の上にある頭蓋骨を露出させた。高速ドリルを用いて線条体の上にある２ｃｍ×３ｃｍの頭骨切開を行い、脳骨髄硬膜はＵ字型の態様を反映した。次いで３個のポリマーカプセル移植物を右方尾状核の頭部に定位的に設置し、そして３個のカプセルを右方被殻に定位的に設置した。つなぎ綱（ｔｅｔｈｅｒ）は、後の検証と回収を容易にするために皮質の表面で切断した。脳脊髄硬質と頭蓋帽を再び相接させてもとの場所に縫合し直した。皮下組織は４−０ Ｃｏａｔｅｄ Ｖｉｃｒｙｌ逆縫合糸で縫合し、皮膚は４−０ Ｅｔｈｉｌｏｎ縫合糸を用いて通常の方法で閉じた。
【０１５９】
カプセル移植の１週間後、サルは、尾状核と被殻のカプセル移植物の直ぐ近傍に、キノリン酸注射を受け、サルのビデオテープ撮影を、通常の条件下およびアポモルヒネ処置の後に、週に１回、移植の１週間前にはじまりそして損傷の後３週間に開始して２週間の間実施した。カプセルは屠殺の直前に取り出した。
【０１６０】
それぞれのカプセルからのｈＮＧＦ放出レベルはＥＬＩＳＡ法で定量した。回収の際のカプセルからのこのｈＮＧＦ放出の生物的活性の適切さは、ＰＣ１２細胞を用いたバイオアッセイにより評価し、移植したＢＨＫ細胞の生存率はニッスル染色で評価し得る。サルの脳は、ＣｈＡＴ、ＧＡＤ、ＮＡＤＰＨ、ＮＰＹ、ソマトスタチン、およびニッスルのために免疫組織学的に処理した。損傷領域はニッスル染色セクションで定量され、ＣｈＡＴ−ｉｒ、ＧＡＤ−ｉｒ、ＮＰＹ−ｉｒ、ソマトスタチン−ｉｒ、ＮＡＤＰＨ染色細胞は両側で定量される。
【０１６１】
（実施例５： ヒトＣＮＳへのＮＧＦの送達）
近年Ｏｌｓｅｎら（Ｊ． Ｎｅｕｒａｌ Ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ， ４， ｐｐ． ７９−９５ （１９９３））は、ミニポンプシステム（Ｍｅｄｔｒｏｎｉｃ）を用いた脳室内注入によるマウスＮＧＦの投与について報告した。この注入システムを腹壁（ａｂｄｏｍｉｎａｌ ｗａｌｌ）の皮下に移植し、皮下カテーテルによって脳室内カテーテルに接続した。この脳室内カテーテルは頭骨の２ ｍｍバーの穴を通して右側の脳室に挿入した。総量３２．４ ｍｌのマウスＮＧＦを３ヶ月の期間にわたって注入した。
【０１６２】
１−１０ ＸＰ−１１からヒトＮＧＦを放出するカプセル化ＢＨＫ細胞を用いる臨床試験において、カプセルは中隔と尾状核の間に位置する脳室空間または選択した新皮質／海馬領域に定位的に設置した。カプセルは２４時間当たり５０〜５００ ｎｇのヒトＮＧＦを放出した。カプセルは３〜１２ヶ月移植したままにしておき、その間患者は行動と生化学的改善についてモニターされ得る。患者は以下を含まむがそれに限定はされない一連の認識機能試験によって評価され得る：（１）ミニ精神状態試験 （ｍｉｎｉ−ｍｅｎｔａｌ ｓｔａｔｅ ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ）：これは認識機能のレベルを評価するために用いられる （Ｆｏｌｓｔｅｉｎら， Ｊ． Ｐｓｙｃｈｉａｔｒ． Ｒｅｓ．， １２， ｐｐ． １８９−１９８ （１９７５））；（２）顔認識試験 （Ｂａｃｋｍａｎら， Ｐｓｙｃｈｏｌ． Ａｇｉｎｇ， ６， ｐｐ． ４８９−４９２ （１９９１））；（３）即時および遅延（３０分）空間記憶試験。患者はまた多くの非侵害的な方法でコリン作動性機能および血流の検査についてモニターされ得る。死後のインビトロ研究の結果、コリン作動性ニコチンレセプターはアルツハイマー病では消失している事が示されている（ＮｏｒｄｂｅｒｇおよびＷｉｎｂｌａｄ， Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｌｅｔｔ．， ７２， ｐｐ． １１５−１１９ （１９８６））。陽電子射出断層撮影 （ＰＥＴ） を用いて、ニコチンレセプターの利用性と機能の指標としての１１Ｃ−ニコチンの取り込みを視覚化し得る。さらに１１Ｃ−ブタノール（ｂｕｔａｍｏｌ）を用いて、脳の様々な領域における脳血流を評価し得る（Ｈｅｒｓｅｏｖｉｔｃｈら， Ｊ． Ｃｅｒｅｂ． Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ Ｍｅｔａｂ．， ７， ｐｐ． ５２７−５４２ （１９８７））。
【０１６３】
（実施例６：鎮痛剤の送達）
以下の実施例では、エンケファリンを分泌する自己細胞の使用により、末期ガン患者における慢性の痛みの緩和に対する本発明の使用を示す。神経幹細胞は、将来の被験者より摘出した脳側室の側背面の脳室下領域から得た１ｍｇの脳組織バイオプシーから得た。胚海馬前駆細胞の増殖集団は、大脳皮質、海馬、間脳、線条体、および／または中隔の組み合わせで、ｂＦＧＦの存在下、Ｒｉｃｈａｒｄｓ の方法（Ｒｉｃｈａｒｄｓら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃｓｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８９， ｐｐ． ８５９１−８５９５ （１９９２））に従って得られる。増殖中の前駆細胞は、メタロチオネインのような構成的なプロモーターによって駆動されるエンケファリン遺伝子を含むｐＮＵＴベクターを用いてトランスフェクトされ、上述のとおりメトトレキセートによって選択される（例えば、Ｋａｕｆｍａｎら、米国特許第４，７４０，４６１号参照）。成功した形質転換体は、選択薬剤に対するそれらの耐性によって同定され、異種遺伝子の発現レベルはラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）によって確認される。
【０１６４】
約 ２５０，０００ の未分化前駆細胞をＳａｇｅｎの方法（Ｓａｇｅｎら、米国特許第４，７５３，６３５号）で被験者のＣＳＦに直接移植する。移植の後、幹細胞は複製の数サイクルの内に分裂を停止し、エンケファリン発現グリア細胞へと分化する。ＣＳＦ内における増加したエンケファリンの持続的な存在は、数日から１ヶ月内にの被験者の鎮痛をもたらす。
【０１６５】
上述した細胞、あるいはウシ副腎クロム親和性細胞は、例えば本発明のＴ１／２膜カプセルでカプセル化して、ヒトの脳室あるいはクモ膜下腔に移植され得る。
【０１６６】
（実施例７：Ｔ１／２膜の製作）
Ｔ１、Ｔ２およびＴ１／２中空ファイバー膜の製作は、米国特許第５，１５８，８８１号、同第５，２８４，７６１号、および同第５，２８３，１８７号に記載された共押出成形紡糸技術と類似の技術により行った。表Ｖにこれら Ｔ１、Ｔ２およびＴ１／２膜の特徴を示す。これらの膜の注型溶液は１２．５％ ＰＡＮ／ＰＶＣ （Ｄｙｎｅｌ）のＤＭＳＯ溶液（ｗ／ｗ）であった。溶液は使用前に０．２２μｍフィルターで濾過した。ファイバーは凝固溶液としての脱イオン水（ＭｉｌｌｉＱ）の入った２３℃の水浴中で紡糸した。ノズルの寸法は以下のとおりである：口環（面板）０．６５０ｍｍ、キャピラリー０．４７５ｍｍ。ポリマー流速（ｕｎｉｔｌｅｓｓ）はＧｉｌｍｏｎｔ ＃０ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒ （ＧＦＯ）で計測した。凝固剤流速（ｕｎｉｔｌｅｓｓ）はＧｉｌｍｏｎｔ ＃４ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒ（ＧＦ４）（ｕｎｉｔｌｅｓｓ）で測定した。Ｔ２およびＴ１／２膜については、ノズルと冷却浴の間の空気空隙の環境を、室内湿度調節装置を用いたミストチャンバー内で湿度調節した。表Ｖ中のＴ１／２ファイバーの破壊強度は１９．３ ± ０．５グラムであった。
【０１６７】
これらのカプセルは移植に際して組織の内部成長の低下を示し、破損なしに１００％の回収率を示した（１０中１０）。
【０１６８】
【表５】
表Ｖに記載したＴ１／２ ＸＰ−１１ファイバーは総外壁表面域の約１２％の総マクロポア域を有していた。約２０％のマクロポアは直径が５〜１０μｍの範囲にあり、そして約８０％のマクロポアは直径約１０μｍであった。
【０１６９】
やはり共押出成形で作製した第２のＴ１／２ 膜は、内径５２２．５±１０μｍで、外径６７０±１１μｍであった。
【０１７０】
ポリマー性キャスティング溶液は、１２．５％ ＰＡＮ／ＰＶＣのＮＭＰ溶液（ｗ／ｗ）であった。ボア凝固溶液と浴は、２３℃の水 （ＭｉｌｌｉＱ 脱イオン化）であった。ポリマー流速はＧｉｌｍｏｎｔ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒ ＃０で測定したところ２５ ｐｓｉで６３であった。凝固剤流速はＧｉｌｍｏｎｔ ＃４ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒで測定したところ５８ ｐｓｉで６９であった。ノズル口環（面板）直径は６５０μｍであった。キャピラリーＯ．Ｄ．は４００μｍ、キャピラリーＩ．Ｄ．は３１０μｍであった。ノズルと冷却浴の間の空気空隙は８．０インチであった。空気空隙の環境は雰囲気空気であった（ミスト無し）。
【０１７１】
応用流体力学的浸透率は約３５．０ｍｌ／（ｍ２ 分 ｍｍＨｇ） であった。破壊強度は３１．０±０．３グラムであった。これらのファイバーは総外壁表面域の約１０％のマクロポア域を有していた。９９％以上のこれらのマクロポアは、直径が１０〜１５μｍの範囲にあった。
【０１７２】
第３のＴ１／２膜を共押出成形で作製した。重合注型溶液は１６．０％ ＰＡＶ／ＰＶＣ （Ｍｗ 約４０ Ｋ）のＮＭＰ溶液（ｗ／ｗ）で、１０％の水を含んでいた。ボア凝固液と浴溶液は２３℃の４０％ＮＭＰ、６０％水であった。ポリマー流速はＧｉｌｍｏｎｔ ＃０ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒで測定したところ２８ ｐｓｉで４０であった。凝固剤流速はＧｉｌｍｏｎｔ ＃４ ｆｌｏｗｍｅｔｅｒで測定したところ１５ｐｓｉで９７であった。ノズル寸法は以下のとおりであった：キャピラリーＯ．Ｄ． ４００ μｍおよび口環Ｉ．Ｄ．６５０μｍ。ノズルと冷却浴との間の空隙は１０．３インチであった。空気空隙の環境は室内湿度調節装置を用いてミストチャンバー内で湿度調節した。
【０１７３】
Ｔ１／２ファイバーは内径約５４５μｍ、外径約６３９μｍであった。これらのファイバーの応用流体力学的浸透率は、約２９ ｍｌ／（ｍ２ 分 ｍｍＨｇ）であった。破壊強度は２９．３±０．５グラムであった。これらのファイバーは、総外壁表面域の約２．４％の総マクロポア域を有していた。約１７％のマクロポアは直径約５μｍ、約３３％は直径約１０μｍ、そして約５０％は直径約１５μｍであった。
【０１７４】
これらのＴ１／２中空ファイバーは非対称である；これらは密な内側の選択透過性障壁と大きなマクロヴォイド小柱壁構造とを有する。外側表面は宿主組織の浸潤にはほんの僅か開放されているが、残りは多孔性（即ち選択的で無い）であるが宿主組織の内部成長に対して閉鎖されている。
【０１７５】
（実施例８：老齢ラットにおける認識機能の改善）
本研究では、痴呆の齧歯類モデルにおける、カプセル化したＮＧＦ産生ベビーハムスター（ＢＨＫ）細胞の潜在的な治療効能を評価した。さらに、ラットは、毒性のような、処置による非認識効果についても試験された。その理由から、ラットの苦痛閾値はホットプレート装置で評価した；そしてラットは有害な効果の証拠について、それらの死亡率、体重、昼／夜サイクルを通しての活動レベルに関連して調べられた。
【０１７６】
（細胞のトランスフェクションと培養）
細胞は実施例１に記載のように調製した。
【０１７７】
（細胞のカプセル化）
個々の長さ７．０±０．５ ｍｍのＴ１／２（ＸＰ１１９３−００１）カプセルを実施例７に記載のように作製した。カプセルの内径は４２５〜５００μｍのサイズ範囲にあり、壁の厚みは５０〜６５ μｍの範囲であった。これらの膜の公称分子量カット・オフ値は、デキストラン運搬ふるい実験で測定したところ約１００ｋＤであった。
【０１７８】
ファイバーデバイスは、細胞の添加接近について近位端で隔膜の固定物を持ち、そして遠位端でシールされていた。ＢＨＫ細胞は単細胞懸濁液として調製し、そして隔膜口に１０４ 細胞／μｌの密度で、生理的コラーゲンと１：１で混合した後注入した。２０２．５ μｌの細胞懸濁液を注入した後、隔膜を除去し、そして接近口をシールした。ＢＨＫ細胞を添加したデバイスは、移植の前、ＰＣ−１培地に４〜５日間維持した。３または４日後、カプセルをハンクス調節塩溶液でリンスし、そしてｈＮＧＦをＥＬＩＳＡで分析するために一晩新鮮な１ｍｌのＰＣ−１培地中に置いた。
【０１７９】
（カプセルのＮＧＦ産生評価）
ＢＨＫ−ＮＧＦを添加したカプセルから放出されたｈＮＧＦの定量は、２部位の酵素免疫アッセイで実施した。Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍにより記載されたプロトコールを改変し、Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ Ｍａｘｉｓｏｒｐ ＥＬＩＳＡプレートを使用した。発色（３０分）の後、サンプルをプレートリーダーで分析し、そして組換えマウスＮＧＦタンパク質を標準として測定した。カプセルは所定の範囲のｈＮＧＦ産生を示した。すべてのラットが同等量の外因性ｈＮＧＦを受けることを保証するため、それぞれのラットに明白に高いｈＮＧＦ産生カプセル１個と明白に低いｈＮＧＦ産生カプセル１個を移植した。
ラット
雄性Ｆｉｓｃｈｅｒ ３４４ラットをＮａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ ＡｇｉｎｇのＨａｒｌａｎ Ｓｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙ ａｇｉｎｇ ｒａｔ ｃｏｌｏｎｙから購入した。比較的高齢のこのラットは引退した繁殖動物であった。これらのラットは行動試験開始前の１．５ヶ月間コロニー室で慣らし、その間ずっとＮＩＨ−３１飼料で生命を維持した。カゼインを含む飼料を用いるとＦ−３４４ラットにおける腎不全の発生が高く、問題となる老齢の動物モデルとしてのそれらラットの使用を可能とする。ＮＩＨ−３１飼料は大豆蛋白を含むので寿命を伸ばし、随意に飼料を与えたＦ−３４４ラットにおける重度の慢性腎臓病の発生を劇的に低減させる。このことから、腎臓疾患が老化研究におけるそれらの使用を混乱させることは無い。Ｗｉｎｎら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９２， ｐｐ． ２３２４−２８ （１９９４）参照。行動試験開始時、ラットは３．３ヶ月（ｎ＝３０）、１８．５ヶ月（ｎ＝４５）、および２４．６ヶ月（ｎ＝６０）であった。結果におけるラットの年齢は、試験のその部分の間のそれらの実際の年齢で表した。
【０１８０】
（カプセル移植）
ラットの麻酔はケタミン（３３ ｍｇ／ｍｌ）、キシラジン（１．７ ｍｇ／ｍｌ）、およびアセプロマジン（１０ ｍｇ／ｍｌ）の混合物１．０ ｍｌ／ｋｇを注入して実施した。ラットはＫｏｐｆ定位器に置き、頭皮に矢状切開を施し、脳室にポリマーカプセルを設置するために適切な座標にバー穴をあけた。ラットへの移植はカプセルを定位枠に取付けた１８−ゲージテフロン（登録商標）製カテーテルに入れて実施した。ステンレス鋼製のオブジュレーター（ｏｂｄｕｒａｔｏｒ）をカニューレ内に入れ、デバイスを脳内に低下させ、側脳室内のカプセルを動かない様に設置するために外のカニューレを上げる間、オブジュレイターを適所に維持した。移植のための定位座標は以下のとおりであった： ブレグマの０．５ ｍｍ前方、矢状縫合の１．５ ｍｍ側方、および皮質表面の７．５ ｍｍ下方。移植物を受けていないラットには疑似手術を施した（麻酔、頭皮切開、頭蓋ドリル、および脳脊髄硬膜せん刺）。
【０１８１】
（死亡率）
日付と一般的外観をそれぞれのラットについて死亡した日に記した。研究を完了したラットの死亡した日付は潅流日付として記録した。
【０１８２】
（体重）
ラットの体重は動物飼育施設到着時から、週に一度測定した。
モリス水迷路（Ｍｏｒｒｉｓ ｗａｔｅｒ ｍａｚｅ）
装置： 直径１．５ｍ、深さ７６ｃｍのガラス繊維製黒色タンクに、水深３２ｃｍまで水（２１℃）を満たした。１０ｃｍ×１０ ｃｍの矩形の台を、参照およびワーキングメモリー試験の間、水面下０．５ｃｍに沈めた。指示試行試験（ｃｕｅｄ ｔｒｉａｌ）の間、台は木製のジベルで出来た白色の筒（高さ３９ｃｍ、直径１．２ｃｍ）を台から垂直に立てて印を付けた。探試行試験（ｐｒｏｂｅ ｔｒｉａｌ）には折り畳み式の台を使用した。Ｐｏｌｙ−Ｔｒａｃｋ Ｓｏｆｔｗａｒｅを搭載したＳＡ−３ Ｔｒａｃｋｅｒ （Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， ＣＡ）を、白色のラットが黒色のバックグラウンドを移動するのを追跡して座標を記録するのに使用した。カメラを水面の１７８ｃｍ上に設置し、タンクの中心に向けた。タンクは、部屋の周囲でタンクの縁の下に位置する２個の１８ワット蛍光灯と４個の５０ワット白熱灯で照明された部屋で、壁に向けて置いた。大きな１２２ｃｍ×１８３ ｃｍの白黒視覚指示（チェッカー盤と標的中心円）をタンクそばの反対側の壁に設置した。
【０１８３】
参照記憶試験と処置の割り当て： 静止台を、タンクの中央と外壁との中間にすべての試験について設置した。４個の４分円弧のランダムな位置から開始する方法を使用した。試験はラットが台を見つけたとき、または２分たった時点で終了した。各試験の後、ラットを台の上に１０秒間置いた。手術の前、ラットは最初の７セッションについては１日あたり１回受け、次の８セッションについては１日あたり２回受けた。手術の後は、移植後１５〜１９日に１日あたり１セッションを５日間受けた。
【０１８４】
移植後探試験： 折り畳み式の台を参照記憶試験で使用したのと同じ４分円弧の中央に設置した。台は試験開始時は低位置にあり、そして３０秒後に高位置に上昇させた。ランダムな位置から開始する方法を使用した。試験はラットが台を見つけたとき、または２分たった時点で終了した。各試験の終了時、ラットを台の上に１０秒間置いた。データは最初の３０秒間のみ収集した。最初の３０秒間（台がタンクの底に折り畳まれているとき）にラットが台の位置を泳いで渡る回数を記録した。ラットは、移植後参照記憶試験が行われたのと同じ日に、１日あたり１試験を５日間受けた。探試験と参照記憶試験の順序は、ある日とその翌日で交互させた。
【０１８５】
移植後指示試験： ゴムバンドで上部に固定された黒色カバーを有する静止台を、参照記憶試験で使用したのと同じ４分円弧の中央に設置した。３個の木製ジベルを、１つを他の上部にテープでつなぎ、そして黒色カバーに取り付けた。ランダムな位置から開始する方法を使用した。探試験完了の後、ラットは３回の試験を試験間の間隔無しに受けた。
【０１８６】
移植後のワーキングメモリー試験： 静止台を、セッション毎に４個の４分円弧すべてからランダムに選択した新たな場所に設置した。ランダムな位置から開始する方法を使用した。１セッションは試験間の間隔無しで３回の試験からなり、移植後２６〜２９日目の４日間実施した。他のシリーズのワーキングメモリーモリス水迷路試験は、試験間の間隔を２時間とって、手術後３０〜３５日目の６日間行った。試験はラットが台を見つけたとき、または２分たった時点で終了した。最初の２試験の終了時に、ラットを台の上に１０秒間置いた。
ホットプレート侵害受容閾値
ホットプレートは５０℃に熱してプレキシガラス製の箱で覆った。ラットをプレートに乗せ、不快の兆候（例えば、足をなめる、足を早く軽く打つ）が示されたら直ちに取り出した。たとえなんら不快な兆候が示されなくても、試行は６０秒後に停止した。応答までの潜伏期間を依存する測定値として記録した。移植の４５日前に、ラットは１日１試行を５日間受け、これら５試行の平均をベースラインパフォーマンスとして計算した。手術の１５日後に、別の５セッションを１日あたり１回行った。最後に、手術の３５日後に別のセッションをホットプレートで実施した。
手術後のフォン・フレイ（ｖｏｎ Ｆｒｅｙ）毛体知覚機能
計量した７．３７、１２．５および２０．９ ｇのフォン・フレイ毛を使用した。ラットをテーブルから４５ｃｍ上に上げた網目状の床（１２０×４５ｃｍ）にのせ、透明なプラスチック製のケージ（２４×１４×１３ ｃｍ）で覆い、１０分間順応させた。フォン・フレイ毛を、後ろ足の底に対して、足の裏の皮膚に、曲がり始めるまで押し付け、１秒当たり約２回の接触の頻度で最高２０回まで押し付けた。ラットが２０回の接触の後応答しなくなった場合、２１の値が割り当てられた。閾値において、ラットは足を早く軽く打つ、足を引っ込める、足をなめるなどして応答した。毛は左右の後ろ足にランダムな順序で存在した。ラットは手術後１セッションを受け、そして左側と右側の平均値を使用した。
活動レベル
ラットを、視野計の回りに赤外光線のならび（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ａｎｉｍａｌ Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ， Ｏｍｎｉｔｅｃｈ Ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ， Ｉｎｃ．）を有し、ベータチップの薄層を底に敷いたプレキシガラス製のケージ（４２ｃｍ×４２ ｃｍ×３０ ｃｍ）に、５：００ｐｍから９：００ａｍまで（消灯は８：００ｐｍから８：００ａｍまで）、移植の前後に入れた。光線の遮断回数を変換して、１６時間のセッションの１時間当たりの総移動距離とした。
【０１８７】
（データ解析）
データの解析にはＳＡＳ−ＰＣＴＭを使用した。分散の解析には、適所に繰り返し測定値のためのオプションを用いて一般線形モデルに対する手順を使用して実施し、クロンバックの係数αを内部信頼性の測定値として計算した（ＳＡＳ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ Ｉｎｃ．， １９８９）。ω２を、効果の大きさの測定値として計算した（ＤｏｄｄおよびＳｃｈｕｌｔｚ， Ｊｒ．， Ｐｓｙｃｈｏｌ． Ｂｕｌｌ．， ７９， ｐｐ． ３９１−９５ （１９７３））。積限界法を用いたＳＡＣ−ＰＣ ＰＲＯＣ ＬＩＦＥＴＥＳＴ法を、階級に従った生存の分布を評価するために使用した。ｌｏｇ−ｒａｎｋテストを、階級間の生存の同等性を検定するために使用した。死亡率以外、すべての報告し解析したデータは、研究の終了まで生き残った実験動物のデータに限定した。
【０１８８】
（カプセルのｈＮＧＦ産生）
１４個すべての（非トランスフェクト・コントロールからの）カプセル化したＢＨＫ−コントロール細胞は、外植の時点で０ｎｇ／２０時間のＮＧＦを放出していた。４３匹の、両側にＢＨＫ−ＮＧＦカプセルを移植したラットが研究の終了まで生存した。移植前のＢＨＫ−ＮＧＦカプセルからのｈＮＧＦ産生は０．８０ ｎｇ／２０ｈｒから１７．４ｎｇ／２０ｈｒの範囲にあり、外植後は０．００ｎｇ／２０時間から１２．１ｎｇ／２０ｈ時間であった。各動物の２個のカプセルからのｈＮＧＦ放出の総計は、移植前が１１．５±０．５６ ｎｇ／２０時間であり、外植後の測定では７．３±０．７５ｎｇ／２０時間に減少した。移植前の２個のカプセルからのｈＮＧＦ放出の総計および外植後の総計のいずれもが、どの水迷路試験の反応性とも相関しなかった。
【０１８９】
（死亡率）
動物飼育施設到着時のラットは１．８ヶ月（ｎ＝３０）、１７ヶ月（ｎ＝４５）、および２３．１ヶ月（ｎ＝６０）であった。最も若齢のラットの０匹、中齢ラットの４５匹中７匹（１５％）、および最も高齢のラットの６０匹中１８匹（３０％）が、動物飼育施設到着と約６５日後の手術予定時との間に死亡した。
【０１９０】
手術および麻酔からの回復の間に死亡したラットはどの月齢集団にも無かった。最も若齢のラットの０匹、カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植した中齢ラットの１８匹中１匹（５．５％）、最も高齢のコントロールラット２０匹中４匹（２０％）、およびカプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植した高齢ラットの２２匹中６匹（２７％）が、移植時と約４０日後の安楽死予定時の間に死亡した。
【０１９１】
安楽死時点のラットの生存数とそれらの月齢は以下のとおりである：合計Ｎ＝９９の研究の最後まで生存したラットについて、それぞれ５．４ヶ月（ｎ＝３０）、２０．６ヶ月（ｎ＝３７）、および２６．７ヶ月（ｎ＝３２）。これら９９匹の生存ラットについてのデータのみが、以下に報告するデータのセットの解析に含まれた。
【０１９２】
（体重）
最も若齢のラットは体重が最も軽く、中齢ラットは最も重く、そして最も高齢のラットは中間の体重であった。年齢がデータの分散、ω２＝０．８９、Ｆ（２，８１）＝７２２．６、ｐ＝．０００１、の大部分を説明した。体重は手術前の８週間で有意に変化した。最も若齢のラットが体重の増加を続けた一方で、中齢および最も高齢のラットは連続的に体重を減少させた。ラットのグループ割り当ては、移植前の体重には基づかず、モリス水迷路の参照試験における移植前の反応性に基づいて行った。その結果、中齢ラットでは、カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植する予定のラットは、コントロール群に割り当てられたラットほど（移植前の時点で）非常に重くはなかった。
【０１９３】
体重は手術後の４週間で変化した。移植／疑似手術の後、最も若齢のラットが体重の増加を続けた一方で、中齢および最も高齢のラットは体重の減少を続けた。事後（ｐｏｓｔ−ｈｏｃ）の対比の結果、カプセル化ＢＨＫ細胞を移植したラットは、疑似手術を施したコントロールに比較して有意に軽量であった、Ｆ（１，８１）＝８．３４、ｐ＝０．００５。その一方、カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植したラットは、カプセル化ＢＨＫ細胞を移植したラットと比較して軽量ではなかった、Ｆ（１．８１，）＝０．０７、ｐ＝０．７９。移植後の平均体重を見ると、疑似移植ラットの体重は３８６．８ ± ９．３ ｇであり、その一方カプセル化ＢＨＫ細胞を移植したラットの体重は疑似移植群より３％少なく（３７５．５ ± １１．０ ｇ）、そしてカプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植したラットの体重は２％少なかった（３７９．８ ± ６．５ ｇ）。分散の比率の点から説明しても、処置の体重に対する影響は小さい。さらに、体重変化の速度とパターンのいずれもが、移植後４週間の処置によって影響を受けたという証拠はなかった。
【０１９４】
（活動レベル）
５：００ｐｍから９：００ａｍまで（消灯は８：００ｐｍ〜８：００ａｍまで）の１６時間の期間にわたる１時間毎の総移動距離を見ると、移植前の活動レベルは最初高くて減少したが、箱の中での第４時間目に照明が消えると劇的に増加した。若齢ラットは高齢ラットに比較してより活動的であった。活動レベルは１日単位の時間によっても有意に影響された。
【０１９５】
処置による主要な効果は、移植後の活動レベルについて統計的に有意であった、Ｆ（２，８１）＝４．３２、ｐ＝０．０１７。それぞれの月齢グループの移植後の活動レベルを事後解析した結果、処置（ＢＨＫ−ＮＧＦ移植物）による有意な効果が、３．３ヶ月ラットについて見られた、Ｆ（２，２４）＝４．１８、ｐ＝０．０２７。処置による主要な効果は、中齢ラット、Ｆ（２，３１）＝１．９２、ｐ＝０．１６、または最も高齢のラット、Ｆ（２，２６）＝２．１２、ｐ＝０．１４のいずれでも有意では無かった。
【０１９６】
（ホットプレート）
カプセル化した、脳室内のＢＨＫ−ＮＧＦ細胞により送達されるＮＧＦは、ホットプレートに応答する潜伏期間に影響しないように見受けられた。処置の主要な効果は統計的に有意で無かった、Ｆ（１，８７）＝０．０３、ｐ＝０．８６５。
【０１９７】
（フォンフレイ毛体知覚閾値）
ラットはより堅いフォン・フレイ毛により早く応答した。若齢ラットはまた高齢ラットに比較してより早く応答する傾向を見せた。外因性ＮＧＦは高齢ラットのより軽い刺激に対する反応性に影響したが、若齢グループには影響しなかった。しかしながら、外因性ＮＧＦを受けた最も高齢のラットは若齢ラットに比較してより応答性ではなかった（図６）。
【０１９８】
（空間学習モリス水迷路）
移植前参照記憶モリス水迷路反応性： 移植前の台への遊泳経路の距離は、１１日間の最初の試験で、すべてのグループについて減少した。高齢ラットは若齢ラットよりも大きく減少していた。すべての月齢に於いてパフォーマンスにはかなり大きな範囲が存在した。動物の処置グループへの割り当ては、移植前の参照記憶モリス水迷路でのそれらのパフォーマンスに従ってそれらをマッチさせて行い、移植前の処置の間には有意な差は存在しなかった。
【０１９９】
移植後参照記憶モリス水迷路： ２つのコントロールグループ間には、移植後のモリス水迷路の参照記憶試験におけるそれらのパフォーマンスに差は無かった。それゆえこれら２つのグループ、カプセル化非トランスフェクトＢＨＫ細胞を移植したグループと疑似手術を受けたグループとを統合して単一のコントロールグループとした。遊泳距離は、移植前の最後に獲得した到達距離より減少することは無かった。
【０２００】
異なる月齢グループ間ではパフォーマンスに差が見られた。カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞はパフォーマンスについて統計的に有意な効果を及ぼさなかった。移植前の参照記憶モリス水迷路でパフォーマンスがより良い５０％とより悪い５０％のラット間では、これら移植後の試験で有意な差が見られた。
【０２０１】
移植後探試験： ２つのコントロールグループ間では、移植後のモリス水迷路探試験におけるそれらの反応性について差は見られなかった。それゆえカプセル化した非トランスフェクトＢＨＫ細胞を移植したグループと疑似手術を受けたグループとを統合して単一のコントロールグループとした。若齢ラットは高齢ラットよりも、最初３０秒の遊泳時間の間、台の位置をより頻繁に横断した。ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞は統計的に有意な効果をもたらさなかった。
【０２０２】
０ ＩＴＩのワーキングメモリーモリス水迷路： 手術の２６〜２９日後、ラットにモリス水迷路のワーキングメモリーバージョンを１日あたり３回試験した。台は試験日毎に、プールの壁からの距離の差異を含めて、プール中のランダムに選択した位置に移動させた。各試験間での遅延は無かった（０ ＩＴＩ）。４日間のパフォーマンスを試行１、２、および３について平均した。ＢＨＫと疑似手術コントロールグループに差は見られなかったのでこれらのグループとを統合して１つのコントロールグループとした。パフォーマンスは３回の試験を通して一貫して改善された。試験における改善パターンは高齢ラットと若齢ラットで異なっていた。カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞によって供給されるＮＧＦはこの課題に於いて統計的に有意な効果を示さなかった。
【０２０３】
２時間のＩＴＩのワーキングメモリーモリス水迷路： 手術後の３０〜３５日後、ラットにモリス水迷路のワーキングメモリー試験を１日あたり３試験実施した。台は試験日毎に、プールの壁からの距離の差異を含めて、プール中のランダムに選択した位置に移動させた。試験の間に２時間の間隔を取り、その間ラットを１５分間赤外熱ランプで乾燥し温めてからそれらをもとのケージに戻した。６日間のパフォーマンスを試験１、２、３について平均した（図７）。 ＢＨＫと疑似手術コントロールグループとの間に差は見られなかったので、これらのグループを統合して１つのコントロールグループとした。
【０２０４】
パフォーマンスは３回の試験を通して一貫して改善された。若齢動物は一般に高齢ラットより良好なパフォーマンスを示した。
【０２０５】
手術前にパフォーマンスのより劣っていたカプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞を移植したラットのパフォーマンスは、コントロールグループ内でパフォーマンスの劣るものよりは良好であった（図７）。
【０２０６】
これらの結果から、遺伝的に改変された異種の細胞を含むＣＮＳ−移植半透性膜は、連続的にｈＮＧＦを産生して非免疫抑制ラットにおける老化に関連した認識障害（ｃｏｇｎｉｔｉｖｅ ｄｅｆｅｃｔ）を弱めること、および手術による移植の手順と低用量のｈＮＧＦに対する長期間の接触のいずれもが安全であるようであることを示唆する。
【０２０７】
（実施例９： カプセル化ＢＨＫ−ＮＧＦ細胞の悩弓損傷老齢サルへの移植）
本研究では、ポリマーでカプセル化した、遺伝的に改変されたヒトＮＧＦ （ｈＮＧＦ）を分泌する細胞の移植が、老齢サルにおける軸索が切断されたＣＢＦニューロンの衰退を防止し得、そしてこれらの移植が移植物に近接するコリン作動性線維の成長を誘発することを示す。
【０２０８】
年齢２４〜２９歳の間（ヒトのほぼ７５〜８７歳に相当）の６匹の雌性アカゲザル（Ｍａｃａｃａ ｍｕｌｌａｔａ）を本研究に使用した。すべてのサルは左の悩弓に片側の損傷を受けた。サルの麻酔はイソフラン（１．５〜２．０％）で行った。マンニトール（０．２５ ｇ／ｋｇ， ｉｖ）を用いた前処理の後、左悩弓の片側切断を実施した（Ｊ．Ｈ． Ｋｏｒｄｏｗｅｒ， Ｍ．Ｓ． Ｆｉａｎｄａｃａ， Ｊ． Ｃｏｍｐ． Ｎｅｕｒｏｌ．， ２９８， ｐｐ． ４４３ （１９９０））。手術ドリルを用いて側矢状骨皮弁（サイズ＝１．５ｃｍ×４．０ ｃｍ）を作り、前頭骨上矢状静脈洞を露出させた。脳脊髄硬膜を引っ込め、自己保持性開創器を用いて半球間の列溝を露出させた。脳梁を縦軸にそって切開した。モンロ開口のレベルで、悩弓は分離した２〜３ ｍｍ幅の白色線維束として容易に見ることが出来る。悩弓を先ず球状解剖器具を用いて切断した。次いで悩弓の切断末端を吸引して損傷の終了を確実にした。
【０２０９】
その後直ちに、各サルに（実施例１に記載したように）、ｈＮＧＦを分泌するように遺伝的に改変された（ｎ＝３）、またはされてない（ｎ＝３）ベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）繊維芽細胞を含むＸＰ−１１ポリマーカプセルの、左側脳室への移植を施した。ＢＨＫ細胞を含むＸＰ−１１カプセルを、個々に、手で側脳室内に精密鉗子を用いて尾状核の頭部と中隔核との間に設置した。合計５個のデバイスを、各動物に吻尾状核（ｒｏｓｔｒｏｃａｕｄａｌ）の方向に向けて１列に移植� | |