| 【発明の名称】 |
植物病害を防除するための微生物資材およびその使用法 |
| 【発明者】 |
【氏名】奥谷 巌根
【住所又は居所】大阪府大阪市中央区平野町四丁目１番２号 大阪瓦斯株式会社内
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| 【要約】 |
【課題】種々の微生物による植物土壌病害を防除するための土壌用微生物資材および方法を提供する。
【解決手段】土壌中での増殖性、定着性、および種々の病原微生物に対する拮抗性に優れるストレプトミセス属ＯＧ-０１２株および／またはＯＧ-０１３株を用いることによって上記課題が解決される。 |
【特許請求の範囲】
【請求項１】 フザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属に属する少なくとも１つの微生物による植物土壌病害を防除するための微生物資材であって、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)から選ばれる少なくとも１つの微生物またはそれら微生物の培養物を担体に含有させた微生物資材。
【請求項２】 フザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属に属する少なくとも１つの微生物による植物土壌病害の防除法であって、請求項１に記載の微生物資材を、植物の種子に被覆もしくは混合した後に播種するか、または、播種用培土、育苗用培土、挿し木用培土もしくは圃場全体に混合して植物を栽培することからなる防除法。
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【発明の詳細な説明】【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、植物病害、特に土壌病害を防除するための微生物資材であって、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)から選ばれる少なくとも１種の微生物またはそれら微生物の培養物を担体に含有させた微生物資材に関する。さらに、本発明は、該微生物資材を利用する植物土壌病害の防除法に関する。
【０００２】
【従来の技術】植物病害、特に土壌病害を防除することは農業生産や緑化活動にとって不可欠な事柄である。しかし、土壌病害を防除することは非常に困難である。土壌病害の主なものには、バーティシリウム(Verticillium)属、フザリウム(Fusarium)属、ピチウム(Phytium)属、リゾクトニア(Rhizoctonia)属、アルタナリア(Alternaria)属、フィトフトラ(Phytophthora)属、コロテシリウム(Corticilium)属、ロセリニア(Rosellinia)属、ヘリコバシディウム(Helicobasidium)属、ペロノスポーラ(Peronospora)属の糸状菌や、シュードモナス(Pseudomonas)属、リゾプス(Rhizopus)属、キサントモナス(Xanthomonas)属の細菌などの微生物による病害が挙げられる。
【０００３】土壌病害を防除する方法としては、一般に、臭化メチルなどの殺菌剤を用いて土壌燻蒸する方法が採られている。しかし、土壌への殺菌剤の散布は、周辺の土壌や水質を汚染するなど環境への負荷が大きく、問題となっている。そこで、環境負荷の少ない植物病害防除法の１つとして、土壌病害の病原菌に拮抗する微生物を選抜し、それを土壌に施用することにより、土壌病害を防除しようという試みが為されている。
【０００４】例えば、「農業有用微生物」[(株)養賢社、１９９０年発行]には、土壌病害を防除するための拮抗微生物として、バーティシリウム属微生物やリゾクトニア属微生物に拮抗性を示すストレプトマイセス属微生物(Cook & Baker, 1983)あるいは栽培床全面処理によりオオムギ苗立ち枯れ病(フザリウム病害)を抑制するストレプトマイセス属微生物(Tahvonen, 1982)が紹介されている。
【０００５】しかし、これまでに利用されている拮抗性を示す微生物の大部分は、プレート上では抗生物質を産生し、拮抗性を示すが、土壌中では抗生物質を産生できないため、あるいは、植物の根圏に定着できないためなどにより、抗生物質が根圏に十分に存在せず、従って、拮抗性を示せず、植物病害の防除効果が現れないなどの問題点があった。
【０００６】さらに、これら微生物の一般的な施用法は、微生物を含む資材を、土壌改良材として、圃場全体に１０ａ(アール)あたり数百ｋｇ程度で投入することからなり、トラクターや耕耘機などの機械を用いて投入するなどの多大な労力が必要であり、その省力化が求められていた。
【０００７】本発明者らは、以前に、植物の根面に定着および根圏で増殖し、植物の根圏を守ることによってバーティシリウム属微生物による土壌病害を防除する微生物として、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)を選抜した。これら微生物は、土壌中での増殖性、根面への定着性に優れており、土壌中においてバーティシリウム属微生物に対して優れた拮抗性を示すことを見い出した。さらに、これら微生物を利用したバーティシリウム病害防除資材とその使用法を開発した。また、これら微生物は、プレート試験において、フザリウム属、ピチウム属およびリゾクトニア属の微生物に対しても拮抗性を有していることを見い出した(特願平９−３２３６８６号として特許出願)。
【０００８】これらストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)は、その優れた定着性および増殖性のゆえに、これら微生物を含む微生物資材を植物の種子に被覆もしくは混合する、または、播種用培土、育苗用培土もしくは挿し木用培土に混合する、などの施用法が可能であり、資材処理法の省力化が可能である。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】本発明者は、バーティシリウム属微生物以外の微生物による植物土壌病害の防除を目的として、さらに研究を進めた。
【００１０】
【課題を解決するための手段】即ち、本発明者は、以前に選抜したストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)が、土壌中で、バーティシリウム属微生物以外の微生物に対して拮抗性を有しているか否かを調べた。さらに、これら微生物を利用したバーティシリウム属微生物以外の微生物による病害の防除に有効な資材とその使用法について検討した。
【００１１】その結果、本発明者は、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)が、土壌中で、バーティシリウム属の微生物だけでなく、植物土壌病害の病原微生物であるフザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属の微生物に対しても拮抗性に優れていることを見い出した。
【００１２】即ち、本発明は、フザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属に属する少なくとも１つの微生物による植物土壌病害を防除するための微生物資材であって、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)から選ばれる少なくとも１つの微生物またはそれら微生物の培養物を担体に含有させた微生物資材を提供するものである。
【００１３】さらに、本発明は、フザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属に属する少なくとも１つの微生物による植物土壌病害の防除法であって、上記の微生物資材を、植物の種子に被覆もしくは混合した後に播種するか、または、播種用培土、育苗用培土、挿し木用培土もしくは圃場全体に混合して植物を栽培することからなる防除法を提供するものである。
【００１４】本発明の植物土壌病害を防除するための微生物資材ならびに植物土壌病害の防除法は、特に、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属、シュードモナス属、リゾプス属およびキサントモナス属に属する少なくとも１つの微生物に対して適用する。
【００１５】
【発明の実施の形態】本発明において用いるストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)は、独立行政法人産業技術総合研究所に平成９年１０月２８日に寄託されている。
【００１６】本発明の微生物資材に用いる担体としては、炭、活性炭、軽石、ひる石、貝化石、米糠、コーヒーかす、石膏、ピートモス、(焼成)ケイソウ土、ゼオライト、パーライト、ベントナイト、大谷石、石灰石、バーミキュライトなどが挙げられる。これらのうち、炭、軽石、ひる石、貝化石、ピートモス、(焼成)ケイソウ土、ゼオライト、パーライト、ベントナイト、バーミキュライトなどの多孔性物質が好ましく、炭、活性炭および(焼成)ケイソウ土が特に好ましい。炭としては、木材を炭化させたもの、あるいは、樹皮、オガクズ、ヤシ殻、バーク、モミ殻などを炭化させたものであってよく、粉末状のものが好ましい。
【００１７】本発明の微生物資材に用いる微生物は、しょ糖・硝酸塩培地(しょ糖 ３０ｇ、ＮaＮＯ3 ２ｇ、Ｋ2ＰＯ4 １ｇ、ＭgＳＯ4・７Ｈ2Ｏ ０.５ｇ、ＫＣl ０.５ｇ、ＦeＳＯ4・７Ｈ2Ｏ ０.０１ｇを水１０００ｍｌに溶解したもの)、ブドウ糖・アスパラギン培地(ブドウ糖 １０ｇ、アスパラギン ０.５ｇ、Ｋ2ＨＰＯ4 ０.５ｇを水１０００ｍｌに溶解したもの)、グリセリン・アスパラギン培地(グリセリン１０ｇ、アスパラギン １ｇ、Ｋ2ＨＰＯ4 １ｇを水１０００ｍｌに溶解したもの)などの液体培地を用いて培養することができる。
【００１８】液体培地のｐＨ、培養日数、培養温度、回転培養の回転速度などは、培養する微生物に最適なものに調整する。例えば、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を用いる場合、培地のｐＨは６.０〜６.８、培養日数は３〜７日、培養温度は３７〜３９℃、回転培養の回転速度は１５０〜４５０ｒｐｍに調整する。
【００１９】本発明の微生物資材は、上記の担体、特に炭、活性炭または(焼成)ケイソウ土を滅菌し、これに上記のように液体培養した微生物を培地成分と共に加え、混合することによって製造することができる。担体１Ｌに対して培養培地１００〜５００ｍｌを加えるのが好ましい。この混合物を、培養する微生物の最適条件下に静置し、１日に１〜５回撹拌を行って、嫌気培養になるのを避けながら固体培養する。例えば、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を用いる場合、培養日数は３〜１０日、培養温度は３７〜３９℃に調整する。固体培養終了後に、通風乾燥などによって乾燥し、本発明の微生物資材を得る。
【００２０】本発明の微生物資材は、担体１ｇあたりにストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)および／またはＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)を１０3〜１０15ｃｆｕ(コロニー形成単位)含有しているのが好ましく、さらに、担体１ｇあたりに１０4〜１０10ｃｆｕ含有しているのが好ましい。
【００２１】本発明の微生物資材は、植物の種子に被覆もしくはそれと混合した後に播種するか、または、播種用培土、育苗用培土、挿し木用培土もしくは圃場全体に混合して使用することができる。本発明の微生物資材の使用量は、資材に含まれる微生物の濃度や、その施用法により大きく異なるが、植物の種子に被覆もしくは混合する場合には、１種子あたりの資材の使用量として、１×１０-8ｇ〜１０ｇ、好ましくは１×１０-6ｇ〜１ｇ、さらに好ましくは１×１０-3ｇ〜０.１ｇを使用すればよい。播種用培土、育苗用培土もしくは挿し木用培土に混合して使用する場合には、培土１Ｌあたりの資材の使用量として、１×１０-3ｇ〜１ｋｇ、好ましくは０.１ｇ〜５００ｇ、さらに好ましくは１０ｇ〜１００ｇを使用すればよい。さらに、圃場全体に混合して使用する場合には、圃場面積１０ａ(アール)あたりの資材の使用量として、１ｋｇ〜１０ｔ(トン)、好ましくは１０ｋｇ〜５ｔ、さらに好ましくは１００ｋｇ〜１ｔを使用すればよい。
【００２２】本発明の微生物資材に含まれる微生物を確実に根圏に定着させ、土壌病害から植物を守るためには、植物の生育早期に、例えばプラグなどの播種時や育苗時に、または挿し木(挿し芽)時に、本発明の微生物資材を適用するのが望ましい。これにより、処理量が少なくなり、経済的に有利になる。
【００２３】
【発明の効果】本発明の微生物資材は、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９３)およびＯＧ-０１３株(ＦＥＲＭ Ｐ-１６４９４)が植物の根面に定着および根圏で増殖することにより、以前の出願(特願平９−３２３６８６号)において明らかにしたように、土壌中でバーティシリウム属微生物の増殖を抑制し、さらには、本願において明らかにしたように、土壌中でフザリウム属、ピチウム属、リゾクトニア属、アルタナリア属、フィトフトラ属、コロテシリウム属、ロセリニア属、ヘリコバシディウム属、ペロノスポーラ属の糸状菌や、シュードモナス属、リゾプス属、キサントモナス属の細菌などの増殖を抑制する。従って、本発明の微生物資材を利用することにより、多くの植物土壌病害を安定的かつ効果的に防除することができる。
【００２４】具体的に、本発明の微生物資材により防除可能な植物土壌病害としては、例えば次のものが挙げられる。即ち、バーティシリウム病害としては、ナス半身萎ちょう病、トマト半身萎ちょう病、ピーマン半身萎ちょう病、キュウリ半身萎ちょう病、ダイコン黒点病、ハクサイ黄化病、イチゴ半身萎ちょう病、ホウレンソウ萎ちょう病、フキ半身萎ちょう病、ウド半身萎ちょう病、オクラ半身萎ちょう病、キク半身萎ちょう病などが挙げられ、フザリウム病害としては、キュウリつる割れ病、メロンつる割れ病、ダイコン萎黄病、ピーマン実腐病、イチゴ萎黄病、ホウレンソウ立ち枯れ病、ネギ乾腐病、ナス半枯病、レタス根腐病、トマト萎ちょう病、ユリ茎腐病、サクラソウ萎ちょう病、カーネーション萎ちょう病などが挙げられ、ピチウム病害としては、ホウレンソウ立ち枯れ病、メロン苗立ち枯れ病、キンギョソウ苗立ち枯れ病などが挙げられ、リゾクトニア病害としては、ホウレンソウ株腐病、トマト苗立ち枯れ病、カーネーション茎腐病、カラー株腐れ病、ニチニチソウ苗立ち枯れ病などが挙げられ、アルタナリア病害としては、ネギ黒紋病、ダイコン黒斑病、ハクサイ黒斑病、ナス褐斑病、ホウレンソウ灰色斑点病、カーネーション斑点病、トルコギキョウ花らい腐敗病などが挙げられ、フィトフトラ病害としては、ダイス茎疫病、ソラマメ疫病、サトイモ疫病、キュウリ疫病、キュウリ灰色疫病、メロン疫病、スイカ褐色腐敗病、トマト褐色腐敗病、ナス褐色腐敗病、ピーマン疫病、イチゴ根腐れ病、タマネギ白色疫病などが挙げられ、コロテシリウム病害としては、エダマメ白絹病、ソラマメ白絹病、サツマイモ白絹病、ジャガイモ白絹病、キュウリ白絹病、スイカ白絹病、トマト白絹病、ナス白絹病、ピーマン白絹病、タマネギ白絹病、ネギ白絹病などが挙げられ、ロセリニア病害としては、サツマイモ白紋羽病、ジャガイモ白紋羽病、カンキツ白紋羽病、リンゴ白紋羽病などが挙げられ、ヘリコバシディウム病害としては、エダマメ紫紋羽病、サツマイモ紫紋羽病、ネギ紫紋羽病、アスパラガス紫紋羽病、カンキツ紫紋羽病、リンゴ紫紋羽病などが挙げられ、ペロノスポーラ病害としては、ダイコンべと病、ハクサイべと病、キャベツべと病、イチゴべと病、ネギべと病、ホウレンソウべと病などが挙げられ、シュードモナス病害としては、ソラマメ青枯病、インゲン青枯病、ジャガイモ青枯病、レタス腐敗病、トマト青枯病、ナス青枯病、ピーマン青枯病などが挙げられ、リゾプス病害としては、ジャガイモ腐敗病、ユリ腐敗病、イチゴ腐敗病などが挙げられ、キサントモナス病害としてはアルファルファ黒腐病、ダイコン黒腐病、エダマメ黒腐病、メロン褐斑細菌病、ニンジン斑点細菌病、カンキツかいよう病、ストック黒腐病、グラジオラス角斑病などが挙げられる。
【００２５】
【実施例】以下に、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明する。
実施例１ キュウリつる割れ病(フザリウム病害)に対する防除効果ヤシ殻燻炭(「キングコール」：キングコール社製)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を、ヤシ殻燻炭１ｇあたりＯＧ-０１２株のｃｆｕが１０8になるように定着させて微生物資材を作成し、播種用培土処理による防除効果を調べた。
【００２６】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。播種用培土としてメトロミックス(グレース社製)を用い、培土１Ｌあたりに１０ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、播種用培土１ｇあたりの菌処理量は１０6になる。このように調製した混合培土をプラグトレー(容積２５ｍｌ)に詰め、キュウリ(「北進」：タキイ種苗)を播種し、３週間栽培を行った。また、比較例１として、微生物資材を添加せず、ヤシ殻燻炭のみをメトロミックスに混合した培土を使用して、同様にキュウリの栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００２７】病原培土は、赤玉土に、予めＰＤＢ培地(ポテト・デキストロース・ブロス：ＤＩＦＣＯ社製)で培養したキュウリつる割れ病の病原菌フザリウム・オキスポーラム(Fusarium oxyporum)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０5となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、１／５０００アールのマグネルポットに詰め、上記プラグトレーで栽培したキュウリの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例１および比較例１の各区あたり２５ポットずつ作成し、６週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００２８】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死、の５段階の発病指数で評価した。各区２５体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数３以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００２９】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表１に示す。
【表１】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を利用した微生物資材を播種用培土に混合することにより、フザリウム病害を防除できることが確認できた。
【００３０】実施例２ ホウレンソウ立ち枯れ病(ピチウム病害)に対する防除効果ケイソウ土(「セライト」：昭和化学社製)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を、ケイソウ土１ｇあたりＯＧ-０１３株のｃｆｕが１０8になるように定着させて微生物資材を作成し、播種用培土処理による防除効果を調べた。
【００３１】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。播種用培土としてメトロミックスを用い、培土１Ｌあたりに１０ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、播種用培土１ｇあたりの菌処理量は１０6になる。このように調製した混合培土をプラグトレー(容積２５ｍｌ)に詰め、ホウレンソウ(「おかめ」：サカタ種苗)を播種し、３週間栽培を行った。また、比較例２として、微生物資材を添加せず、メトロミックスのみを培土として、同様に栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００３２】病原培土は、赤玉土に、予めＰＤＢ培地で培養したホウレンソウ立ち枯れ病の病原菌ピチウム・デバルヤナム(Pythium debaryanam)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０5となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、１／５０００アールのマグネルポットに詰め、プラグトレーで栽培したホウレンソウの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例２および比較例２の各区あたり２５ポットずつ作成し、６週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００３３】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死、の５段階の発病指数で評価した。各区２５体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数３以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００３４】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表２に示す。
【表２】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を利用した微生物資材を播種用培土に混合することにより、ピチウム病害を防除できることが確認できた。
【００３５】実施例３ カーネーション茎腐病(リゾクトニア病害)に対する防除効果焼成ケイソウ土(「イソライト」：イソライト工業製)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を、焼成ケイソウ土１ｇあたりＯＧ-０１３株のｃｆｕが１０6になるように定着させて微生物資材を作成し、挿し木用培土処理による防除効果を調べた。
【００３６】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。挿し木用培土としてタキイ育苗用培土(タキイ種苗製)を用い、培土１Ｌあたりに１ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、挿し木用培土１ｇあたりの菌処理量は１０4になる。このように調製した混合培土を育苗ポット(容積３００ｍｌ)に詰め、カーネーション(「アンファンドニース」：タキイ種苗)の切り枝を挿し木し、６週間栽培を行った。また、比較例３として、微生物資材を添加せず、タキイ育苗用培土のみを培土として、同様に栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００３７】病原培土は、赤玉土およびメトロミックスを体積比で等量混合したものに、予めＰＤＢ培地で培養したカーネーション茎腐病の病原菌リゾクトニア・ソラニ(Rhizoctonia solani)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０5となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、容積１８Ｌのプラスチックプランター(縦１８ｃｍ、横５５ｃｍ、深さ２０ｃｍ)に詰め、ポットで栽培したカーネーションの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例３および比較例３の各区あたり２０ポットずつ作成し、８週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００３８】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死、の５段階の発病指数で評価した。各区２０体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数３以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００３９】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表３に示す。
【表３】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を利用した微生物資材を挿し木用培土に混合することにより、リゾクトニア病害を防除できることが確認できた。
【００４０】実施例４ ハクサイ黒斑病(アルタナリア病害)に対する防除効果ケイソウ土(「セライト」)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を、ケイソウ土１ｇあたりＯＧ-０１２株のｃｆｕが１０6になるように定着させて微生物資材を作成し、種子被覆処理による防除効果を調べた。
【００４１】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。ハクサイ種子(「優黄」：タキイ種苗)を用い、種子１００粒あたりに１０ｇの上記の微生物資材を被覆した。これにより、種子１粒あたりの菌処理量は１０5になる。また、比較例４として、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を定着させていないケイソウ土(「セライト」)を、種子１００粒あたりに１０ｇの割合で、同様にハクサイ種子に被覆した。これらの被覆種子を以下の病原培土に播種し、その発芽および苗の生育を調べた。
【００４２】病原培土は、赤玉土およびメトロミックスを体積比で等量混合したものに、予めＰＤＢ培地で培養したハクサイ黒斑病の病原菌アルタナリア・ジャポニア(Alternaria japonica)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０6となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、容積１００ｍｌのビニルポットに詰め、上記の被覆種子を１粒ずつ植え付けた。このようなポットを実施例４および比較例４の各区あたり５０ポットずつ作成し、４週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００４３】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：生育遅延、２：発芽したものの下葉に褐変が認められる、３：発芽したものの生育障害有り、４：発芽せず、の５段階の発病指数で評価した。各区５０体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数２以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００４４】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表４に示す。
【表４】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を利用した微生物資材を種子に被覆することにより、アルタナリア病害を防除できることが確認できた。
【００４５】実施例５ カンキツ白紋羽病(ロセリニア病害)に対する防除効果ヤシガラ活性炭(「ハイプロ」：キングコール社製)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を、ヤシガラ活性炭１ｇあたりＯＧ-０１２株のｃｆｕが１０6になるように定着させて微生物資材を作成し、挿し木用培土処理による防除効果を調べた。
【００４６】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。挿し木用培土としてタキイ育苗用培土を用い、培土１Ｌあたりに１ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、挿し木用培土１ｇあたりの菌処理量は１０4になる。また、比較例５として、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を定着させていないヤシガラ活性炭のみをタキイ育苗用培土に同様に混合して、挿し木用培土を調製した。このように調製した混合培土を育苗ポット(容積３００ｍｌ)に詰め、カンキツ(「明和キンカン」：タキイ種苗)の切り枝を挿し木し、８週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００４７】病原培土は、赤玉土およびメトロミックスを体積比で等量混合したものに、予めＰＤＢ培地で培養したカンキツ白紋羽病の病原菌ロセリニア・ネカトリックス(Rosellinia necatrix)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０5となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、容積３０Ｌの大型プラスチックポット(直径３０ｃｍ、深さ５０ｃｍ)に詰め、ポットで栽培したカンキツの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例５および比較例５の各区あたり１５ポットずつ作成し、１２週間栽培を行った。栽培は、温室で行った。
【００４８】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死の５段階の発病指数で評価した。各区１５体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数２以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００４９】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表５に示す。
【表５】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株を利用した微生物資材を挿し木用培土に混合することにより、ロセリニア病害を防除できることが確認できた。
【００５０】実施例６ ナス青枯れ病(シュードモナス病害)に対する防除効果焼成ケイソウ土(「イソライト」)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を、焼成ケイソウ土１ｇあたりＯＧ-０１３株のｃｆｕが１０8になるように定着させて微生物資材を作成し、播種用培土処理による防除効果を調べた。
【００５１】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。播種用培土としてメトロミックスを用い、培土１Ｌあたりに１０ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、播種用培土１ｇあたりの菌処理量は１０6になる。このように調製した混合培土をプラグトレー(容積２５ｍｌ)に詰め、ナス(「千両」：タキイ種苗)を播種し、４週間栽培を行った。また、比較例６として、微生物資材を添加せず、メトロミックスのみを培土として、同様に栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００５２】病原培土は、赤玉土に、予めＰＤＢ培地で培養したナス青枯れ病の病原菌シュードモナス・ソラナセアラム(Pseudomonas solanacearum)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０4となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、１／５０００アールのマグネルポットに詰め、プラグトレーで栽培したナスの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例６および比較例６の各区あたり２５ポットずつ作成し、６週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００５３】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死、の５段階の発病指数で評価した。各区２５体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数３以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００５４】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表６に示す。
【表６】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を利用した微生物資材を播種用培土に混合することにより、シュードモナス病害を防除できることが確認できた。
【００５５】実施例７ ハクサイ黄化病(バーティシリウム病害)に対する防除効果焼成ケイソウ土(「イソライト」)を担体とし、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株およびストレプトミセス属ＯＧ-０１３株を、焼成ケイソウ土１ｇあたり各菌株のｃｆｕがともに１０7になるように定着させて微生物資材を作成し、播種用培土処理による防除効果を調べた。
【００５６】この資材による病害防除効果の確認試験は以下の通りとした。播種用培土としてメトロミックスを用い、培土１Ｌあたりに１０ｇの上記の微生物資材を添加して充分に混合した。これにより、播種用培土１ｇあたりの菌処理量は２×１０5になる。このように調製した混合培土をプラグトレー(容積２５ｍｌ)に詰め、ハクサイ(「優黄」)を播種し、３週間栽培を行った。また、比較例７として、微生物資材を添加せず、メトロミックスのみを培土として、同様に栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００５７】病原培土は、赤玉土に、予めＰＤＢ培地で培養したハクサイ黄化病の病原菌バーティシリウム・ダーリエ(Verticillium dahaliae)を、培土１Ｌあたりのｃｆｕが１０5となるように完全混合することにより調製した。この病害培土を、１／５０００アールのマグネルポットに詰め、プラグトレーで栽培したハクサイの苗を、１株ずつ植え付けた。このようなポットを実施例７および比較例７の各区あたり２５ポットずつ作成し、４週間栽培を行った。栽培条件は、明期１６時間２５℃、暗期８時間２０℃であり、湿度は７０％とした。
【００５８】栽培終了後、病徴を、０：発病せず、１：下葉に黄変が認められる、２：下葉に褐変が認められる、３：上位葉に褐変が認められる、４：枯死、の５段階の発病指数で評価した。各区２５体の発病指数の平均値を発病度とし、発病指数３以上の病徴が現れた個体数の割合を発病率とした。
【００５９】このように測定した各区の発病度および発病率を以下の表７に示す。
【表７】
これらの結果から、ストレプトミセス属ＯＧ-０１２株とＯＧ-０１３株を併用した微生物資材を播種用培土に混合することにより、バーティシリウム病害を防除できることが確認できた。
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| 【出願人】 |
【識別番号】００００００２８４
【氏名又は名称】大阪瓦斯株式会社
【住所又は居所】大阪府大阪市中央区平野町四丁目１番２号
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| 【出願日】 |
平成１４年３月２２日（２００２．３．２２） |
| 【代理人】 |
【識別番号】１０００６２１４４
【弁理士】
【氏名又は名称】青山 葆 （外２名）
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| 【公開番号】 |
特開２００３−２７７２１３（Ｐ２００３−２７７２１３Ａ） |
| 【公開日】 |
平成１５年１０月２日（２００３．１０．２） |
| 【出願番号】 |
特願２００２−８０７３０（Ｐ２００２−８０７３０） |
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