植物体育成用容器、植物体栽培用支持体および植物体育成方法

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【発明の名称】	植物体育成用容器、植物体栽培用支持体および植物体育成方法
【発明者】	【氏名】小保内康弘【氏名】向山武彦
【要約】	【課題】植物体の移植作業の自動化を可能にし、更には移植作業時の植え傷みを軽減することが可能な植物体育成用の容器ないしシートを提供する。【解決手段】内部に植物体の少なくとも一部を収容可能とした容器状の基材１１と、該容器状基材１１の内部に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子１２とを含む植物体育成用容器。該容器を用いた場合、植物体の移植作業の自動化が可能となり、且つ、植物体の移植作業時の植え傷みを軽減することが可能となる。

【特許請求の範囲】
【請求項１】内部に植物体の少なくとも一部を収容可能とした容器状の基材と、該容器状基材の内部に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含む物体育成用容器であって、前記ハイドロゲル形成性の高分子が、０℃以上７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化する高分子であることを特徴とする植物体育成用容器。
【請求項２】シート状の基材と、該基材の少なくとも一方の表面上に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含む植物体育成用シートであって、且つ前記ハイドロゲル形成性の高分子が、０℃以上７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化する高分子であることを特徴とする植物体育成用シート。

【発明の詳細な説明】【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、組織培養や圃場栽培における種子の発芽ないしは発芽後の生長、および植物体の育成に好適に使用可能な、植物体の育成（以下においては、「発芽ないしは発芽後の生長」を包含する意味で用いる。）用の容器ないしシート、植物体栽培用支持体、土壌改質剤；および人工培養に用いたゲル状支持体を実質的にそのまま用いて、通気非制限環境下における栽培（例えば、圃場栽培）を行うことが可能な植物体の育成（本明細書において、「育成」の語は「発芽ないしは発芽後の生長」を包含する意味で用いる。）方法に関する。
【０００２】更に詳しくは、本発明は、植物体（以下においては、「種子」を包含する意味で用いる。）の移植作業を容易に行うことができ、該植物体の発芽ないし生長を促進させることが可能で、しかも厳密な水管理等の必要性を大幅に軽減することが可能な、植物体の育成用容器ないしシート；植物体の栽培に際して該植物体を支持ないし担持するために用いられる植物体栽培用支持体；および、植物体の栽培に際して、他の植物体支持用担体（例えば、土壌）と組み合わされて、該植物体を支持ないし担持するために用いられる土壌改質剤（このような土壌改質剤を土壌等の担体に施すことにより、該担体の物理的、化学的、および／又は微生物学的性質を改良ないし改質することが可能となる）；および、培養から栽培にわたる連続的な育成を可能にする植物体育成方法；特に、容器内培養から圃場栽培への移行に際して、該培養に用いた支持体（植込材料）を栽培においてもそのまま使用可能とすることにより、移植工程の省略ないし簡略化、根の物理的損傷の回避、栽培移行後の植物体のスムーズな生長を可能とする連続植物体育成方法；に関する。
【０００３】本明細書において、植物体の「培養」とは、植物体育成系内への通気が制御ないし制限された条件下（主として容器内）で植物体を発育ないし増殖させることをいい；「栽培」とは、植物体育成系内への通気が制限されていない条件下（主として温室内、露地等）で植物体を発育ないし増殖させることをいう（このような培養の定義に関しては、竹内ら編「植物組織培養の技術」第１頁（１９８３年）朝倉書店；山田ら編「岩波生物学辞典」（第３版）第１００６頁（１９８３年）岩波書店、を参照することができる）。
【０００４】
【従来の技術】近年、目的に合った形質を有する植物体の育成あるいは再生技術の開発が注目を集めている。このような育成・再生技術の中でも、植物組織培養技術、すなわち、植物体の一部分を母体から切り離して、培養用容器の中で育成させる技術は、遺伝的に均一なクローンを短期間に大量増殖させることが可能な点から、特に注目を集めている（大川清「花卉園芸総論」第５４頁（１９９５年）養賢堂）。
【０００５】従来より、植物組織培養による植物体（主に苗）の生産においては、支持体として寒天ゲルが用いられてきた。しかしながら、寒天ゲルは蒸発や植物体の吸収によって水分を放出すると、再び水分を殆ど吸収しないという特性を有する。特に、圃場栽培等の開放系の栽培環境下では、寒天の水分保持機能とゲルとしての植物体保持機能は急速に低下する。したがって、当然のことながら、寒天ゲルは、開放系の圃場栽培における支持体（ないし植込材料）としては、全く使用不可能であった。
【０００６】このため、苗を容器内培養から圃場栽培へ移行する際には、寒天ゲルの除去が不可欠である。しかしながら、この寒天ゲルの除去工程は一本づつ手作業で行わざるを得ないため、多大の労力および時間を要するのみならず、該工程は根に損傷を与えたり、根腐れを起こしやすい等の問題を有する。
【０００７】一方、非常に小さい苗（微小苗）の培養においては、一般的には、培養液に糖が添加される。微小苗は通常種子の胚乳の様な組織を持たず、また、光合成を行う茎葉部が十分発達していないため、該微小苗が直接吸収できる炭素源を添加することが必要となるからである。組織培養苗のみならず、ラン科植物のように胚乳がない種子の場合も、同様の趣旨から、容器内で発芽させた微小苗の有糖培養が行われている。しかしながら、植物体育成系内に添加された糖は雑菌の繁殖を助長するため、糖を含む寒天ゲルを、そのまま圃場栽培の様な開放系の（非無菌的な）環境において使用することは、実質的に不可能である。
【０００８】上述したように、従来の寒天ゲルを用いる培養方法を用いた場合には、培養から圃場栽培までの連続した（培養時の支持体をそのまま用いた）植物体の育成が実質的に不可能であるため、寒天除去工程が必須であった。更に、この寒天除去工程は手作業で行わざるを得ないため時間がかかり、更には、根に損傷を与え、残存する寒天ゲルにより雑菌が繁殖して根腐れを起こしやすいという問題を有していた。
【０００９】上記したような「培養」から「栽培」への移行の問題に加えて、植物体の生長過程では、水分、養分等の植物体への供給量コントロールも重要な課題である。
【００１０】植物体の生理の点からは、「水」は植物体の生長に最も大きな影響を与える環境因子の１つであり、特に光合成に必須な要素である。このように極めて重要な環境因子たる水分の吸収には、主に、植物体の葉裏面の開口たる「気孔」に基づく蒸散が関与している。
【００１１】すなわち、水分の蒸散により植物体を構成する細胞の含水率が低下すると、植物体内の水分が非平衡状態になるが、これを平衡状態に保とうとする作用である「蒸散圧」に基づき、植物体は、土壌中の水分をその根から吸収する。
【００１２】上記した気孔は光合成に必要なＣＯ₂ を空気中から取り入れる機能をも有するが、該気孔の開口の存在により、主に光合成を行うべき葉肉細胞の水分も蒸散してしまうため、該葉肉細胞内の不足水分も速やかに補給される必要がある。つまり、植物体が光合成をより効率的に行うためには、太陽エネルギーやＣＯ₂ の吸収に伴って、水が潤沢に該植物体に対して供給されなければならない。
【００１３】仮に、温度が高く日光の光量が多い日中の環境下において、植物体が利用可能な水が栽培土壌中で不足したり、あるいは該植物体の根の吸水能力が低下している場合、植物体内の水分は減少し、主に光合成を行うべき葉肉細胞内の水分も減少する。その結果、光合成は著しく阻害されるばかりか、光合成産物が著しく減少して植物体そのものの生長も抑制され、該植物体がやがて枯死に至る危険性がある。また、土壌中の水分が不足した場合には、該土壌中に含まれる無機塩類が高濃度となり、逆に土壌中の水分が過多の場合には、植物体の根への酸素供給が不充分となるため、いずれの場合にも植物体が悪影響を受ける虞がある。
【００１４】一方、「温度」も、植物体の生長に最も大きな影響を与える環境因子の１つである。例えば、無機塩類の根からの吸収は温度上昇と共に増加するが、一定の温度に達すると極大となり、これより高い温度では急激に低下する。この無機塩類吸収の極大値は、多くの植物体でほぼ４０℃の付近にあることが知られている。低温域での養分吸収は主に単純な拡散現象によるが、温度上昇と共に生化学的吸収過程による能動的養分吸収の割合が増加する。４０℃以上の高温領域では、生化学的吸収過程に関連する酵素系の不活化が、養分吸収速度の急激な低下の一因と考えられている。従って、温度変化に対する、栽培土壌中の水及び養分の量と濃度との制御は、植物体の栽培にとって非常に重要な技術であると言える。
【００１５】他方、作物の生産技術の観点からは、穀類、野菜、花卉、果樹等の作物に関しては、古くから自然環境下で露地栽培が行われてきたが、このような露地栽培においては、季節による激しい温度変化、更には不安定な降雨条件等により作物の生産量は大きく変動し、産業としての農業の発展が制約されてきた。
【００１６】近年、上記した露地栽培の問題を克服する目的で、あるいは周年（１年中どの時期でも）出荷の目的で、温室等における施設内栽培が普及した結果、安定して農産物を供給することが可能となった。
【００１７】しかしながら、施設内栽培においては、作物の生産コストは高くならざるを得ない。施設内栽培においては、温室等の施設本体の建設、該施設における灌水装置等の内部設備、あるいは該施設内の温度、養分濃度、光強度等を調節するために必要とされる環境制御機器等の設備投資費が莫大となるからである。他方、前述した露地栽培においても、自然環境の急激な変動による影響を克服する目的で、灌漑、灌水設備等の多大な投資が必要となる場合も多い。
【００１８】一般に、近代の農業の発展を支えた重要な要因の一つとして、有機質肥料に代わる化学肥料の施用が挙げられている。しかしながら、該化学肥料が実際に植物体に吸収される割合は、通常は３０％にも満たないものとされているため、近年では、化学肥料による世界的な土壌の不良化、環境汚染の問題に加えて、化学肥料を製造する原料となる自然資源が枯渇する恐れも懸念されている。
【００１９】上述したような諸問題を解決する点から、植物体に対する有効な肥料の施用法、ないし肥料を有効に植物体に施用することが可能な土壌等の「植物体支持用担体」の改良が、強く要請されてきている。
【００２０】上記した「担体」の問題に加えて、近年、植物体育成の分野においては、該育成用の「容器」の改良も重要な課題となっている。
【００２１】従来より、植物体の移植作業は、長時間の煩雑な手作業で行うことを必要としている。加えて、このような手作業は、植物体を傷める、あるいは、移植後の植物体の初期生長が著しく損なわれる等の種々の問題が指摘されてきた。このような観点から、植物体の移植作業の自動化、移植作業時の植え傷みの軽減、ないしは移植後の植物体の初期生長の促進等が強く望まれて来た。
【００２２】更には、従来の植物体育成用容器には、根圏の物理的環境を劣悪化させ易いという問題があった。一般に、植物体の根は容器壁面まで伸長すると、該壁面に沿って下部に伸長し、容器の底面まで達すると、該底面に沿ってぐるぐると巻くように伸長する場合が多い。このような根の伸長現象は、根が重力の方向へ伸長する性質と、根に対する接触面刺激により伸長する性質とに基づくものとされている。一方、容器を用いる植物体の栽培では、植物体の生長に対してどのような保持用担体（例えば、土壌）が好適であるかが、従来から特に重点的に検討されて来たため、容器内壁面の物理的環境の検討は充分ではなかった。
【００２３】一般に、植物保持用担体の内部と容器内壁面とでは物理的環境が全く異なる。後者の環境、すなわち容器内壁面の近傍では、寒暖、乾湿の差が激しいために、該内壁面に接触した根の生長点や、内壁面に伸張した根の中途部分が褐変枯死する等の問題が特に起こり易い。
【００２４】従来より、植物体の育成に使用されてきた容器あるいはシートとしては、素焼（陶器）鉢、プラスチック鉢、ビニールポット、プランター、プラグ苗用トレー、苗用トレー、ペーパーポット、ビニールシート等が挙げられる。これらのいずれの容器においても、該容器の材質が（通常のプラスチック素材のように）水分または外気の流通を遮断してしまうものである場合には、該容器の内壁面近辺は、水が貯留し易く、根腐れが起こり易い場所である。一方、該容器の材質が素焼の陶器、ペーパー等の水分ないしは外気の流通が可能なものである場合には、容器の内壁面近辺は、逆に、水分が不足して植物体の生長が著しく阻害され易い場所である。
【００２５】加えて、圃場栽培において使用される容器は、通常は、容器上部と下部とが開放系であり、潅水後には、植物体支持用担体を通じて容器下部から直ちに水が排出されてしまうため、過剰な潅水の必要性や養分の流亡が問題となっている。また、一般家庭等で使用される容器の場合には、容器下部から排出される水等を受ける「受皿」が必要であった。
【００２６】更には、このような開放タイプの容器を用いた場合には、潅水直前の水分量が急激に低下し易いため、養分濃度が急激に上昇することとなり、植物に対して悪影響を与える虞がある。一方、このような状況を改善するために、潅水量、潅水頻度を増大させたり、あるいは保水性の高い従来の容器および土壌を選択した場合には、潅水直後から持続する過剰な水分の滞留が根への酸素供給を阻害し、悪影響を与える微生物が繁殖して根腐れを起こし易くなる。反対に、酸素供給を促したり、悪影響を与える微生物の繁殖を抑えるために乾燥させた場合には、上記の水分量低下、養分濃縮の問題が顕著となるため、植物が要求する施肥量よりも少ない施肥量しか供給できなくなる。
【００２７】現状の植物体育成用容器を用いる植物体栽培は、上述したような悪循環ないし自己矛盾に陥っており、植物が有する生長力を最大限に引き出すことを困難にしている。
【００２８】更には、上述した開放タイプの容器上部は完全開放状態であるため、植物体支持用担体の上部が下部より乾燥し易く、容器内の水分状態が不均一となって、植物体に対して悪影響を与え易い。
【００２９】他方、下部閉鎖型の容器を用いることは一般的には行われていない。これは、従来の容器を単に下部閉鎖型として従来の土壌と組合せて用いた場合には、水の滞留が顕著となって前述した酸素供給不足、病原菌の繁殖による根腐れが極めて生じ易くなるからである。
【００３０】上述したように、従来の植物体育成用の容器ないしシートにおいては、根圏の環境が、植物体の育成（種子の発芽及び発芽後の生長を含む）にとって好適な環境とは言えなかった。したがって、このような従来の容器・シートを用いた場合には、潅水量、潅水頻度、肥料を始めとする溶液の濃度等の複雑な組合せないしは調節が必要であるため、これらの要素の厳密な管理には多大なコストが必要とされていた。
【００３１】通常、各種の植物体に関しては、その種類、大きさ等に応じて最も適切な育成容器の内容積が経験的に知られている。根が土壌中で生長し、育成容器の壁に到達すると、機械的な接触刺激が新たな根の発生を促すと言われており、この観点からすれば、容器の容積が小さければ小さい程、植物体の根の発生が良好となる。他方では、容器の内容積は、植物体に対して供給する水分・栄養素の貯蔵量と密接に関連するため、通常、ある程度以上の容器の体積が、植物体の育成に必要とされている。
【００３２】一般的な栽培農家における状況については前述した通りであるが、近年は一般家庭においても、いわゆる「家庭菜園」等において多種類の植物体育成用の容器が使用されてきている。一般家庭においては、栽培農家と異なって熟練した経験および技術がないため、植物体の適切な育成は、栽培農家におけるよりも一層困難であった。
【００３３】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、上記した従来技術における問題を解決することが可能な植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を提供することにある。
【００３４】本発明の他の目的は、温度等の外的環境因子の変化に応じて、植物体に供給すべき水分量、養分量、あるいは植物体生長調節物質の量等を、該植物体の要求に合せて適切にコントロール可能な植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を提供することにある。
【００３５】本発明の更に他の目的は、露地栽培や施設内栽培における省力化、設備コスト低減により生産性向上を可能とする植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を提供することにある。
【００３６】本発明の更に他の目的は、植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を用いつつ、植物体を効率的に栽培する方法を提供することにある。
【００３７】本発明の更に他の目的は、上記した従来の植物体育成用の容器の問題点を解決した植物体育成用の容器ないしシートを提供することにある。
【００３８】本発明の更に他の目的は、植物体の移植作業の自動化を可能にし、更には移植作業時の植え傷みを軽減することが可能な植物体育成用の容器ないしシートを提供することにある。
【００３９】本発明の更に他の目的は、厳密な水分等の管理を必須とせずに、植物体の根圏環境を好適に制御することが可能な容器ないしシートを提供することにある。
【００４０】本発明の更に他の目的は、植物体の発芽ないし生長に必要な、水分および／又は栄養素を貯蔵する能力を有する植物体育成用の容器ないしシートを提供することにある。
【００４１】本発明の更に他の目的は、上記した従来技術の欠点を解消した植物体育成方法を提供することにある。
【００４２】本発明の更に他の目的は、培養から栽培まで連続して使用可能な支持体（ないし植込材料）を用いた植物体育成方法を提供することにある。
【００４３】
【課題を解決するための手段】本発明者らは鋭意研究の結果、架橋構造を有し、しかも特定物性の可逆的変化を示すハイドロゲル形成性の高分子を、植物体栽培時に該植物体を支持すべき媒体ないしその一部（土壌改質剤）として用いることが、上記問題点の解決に極めて効果的であることを見いだした。
【００４４】本発明の土壌改質剤ないし土壌改質剤は上記知見に基づくものであり、より詳しくは、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含むことを特徴とするものである。
【００４５】更に、本発明によれば、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含む土壌改質剤と；植物体支持用担体とを少なくとも含むことを特徴とする植物体栽培用支持体が提供される。
【００４６】更に、本発明によれば、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含む植物体栽培用支持体を、少なくとも植物体の周囲に配置し；該植物体を支持しつつ栽培することを特徴とする植物体の栽培方法が提供される。
【００４７】更に、本発明によれば、植物体支持用担体と、該担体に乾燥時の重量パーセントで０．１～１０ｗｔ. ％添加されてなる土壌改質剤とを含む植物体栽培用支持体を少なくとも植物体の周囲に配置して、該植物体を支持しつつ栽培する植物体の栽培方法であって；前記土壌改質剤が、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって、０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含むことを特徴とする植物体の栽培方法が提供される。
【００４８】本発明者らは上記の知見に基づいて更に研究を進めた結果、容器内壁面の少なくとも一部（例えば、植物体育成用の容器の底面および／又は側面）に架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子を配置することが、前述した従来技術における問題点の解決に極めて効果的であることを見い出した。
【００４９】本発明の植物体育成用容器は上記の知見に基づくものであり、より詳しくは、内部に植物体の少なくとも一部を収容可能とした容器状の基材と、該容器状基材の内部に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含むことを特徴とするものである。
【００５０】本発明者は更に、上記ハイドロゲル形成性の高分子をその表面に配置してなるシート状の部材を、従来の植物体育成用容器の内壁面に配置した場合にも、上記した「ハイドロゲル形成性の高分子を内部に配置してなる植物体育成用容器」と同様の植物体の育成効果が得られることを見出した。
【００５１】本発明の植物体育成用シートは上記の知見に基づくものであり、より詳しくは、シート状の基材と、該基材の少なくとも一方の表面上に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含むことを特徴とするものである。
【００５２】上記した本発明の容器ないしシートにおいては、「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」は、０°以上７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率の変化が温度に対して可逆的である高分子であることが好ましい。
【００５３】更に、本発明においては、上記高分子が粉体ないし粒体の形態である場合には、該粉体ないし粒体の乾燥時の大きさは、０．１μｍ～５ｍｍ程度であることが好ましい。
【００５４】本発明者らは更に研究を進めた結果、水と、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを少なくとも含むゲル状支持体が、その架橋構造内に配置された水の特性に基づき、通気制限環境下（培養時）のみならず通気非制限環境下（栽培時）においても一定の制菌性を発揮することを見いだした。本発明者らはこの知見に基づいて更に研究を進めた結果、このような制菌性を有するゲル状支持体は、通気制限環境下から通気非制限環境下に亘る植物体育成において、支持体（ないし植え込み材料）として一貫して連続使用可能であることを見い出した。
【００５５】本発明の植物体育成方法は上記知見に基づくものであり、より詳しくは、（ａ）水と、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを少なくとも含むゲル状支持体を用いて、通気制限条件下で植物体を培養し、次いで、（ｂ）前記培養後の植物体に接触しているゲル状支持体を実質的にそのまま用いつつ、通気非制限条件下で植物体を栽培することを特徴とするものである。
【００５６】上記した本発明の植物体育成方法において、ゲル状支持体を「実質的にそのまま」用いるとは、培養後の植物体に付着したゲル状支持体に対して、該植物体を傷つける可能性のある手法ないし器具（例えば、ピンセット等による除去方法）による該ゲル状支持体の「積極的な除去作業」を行わないことを意味する。したがって、本発明においても、培養から栽培への移行に際して、ゲル状支持体の植物体からの自然落下、ないし植物体の根等を軽く払う程度のゲル状支持体の脱落は、許容されるものとする。
【００５７】一般に、植物体は、露地栽培のみならず施設内栽培に於いても、昼夜２４時間を周期とする温度変化、及び春夏秋冬を周期とする温度変化に晒されている。前述したように、植物体は高温になると水、栄養、植物体生長調節物質等の要求性が高くなり、他方、低温になると植物体の該要求性が低下する。従って、該植物体への灌水、施肥、あるいは植物体生長調節物質の投与等は、上記した温度変化と連動して実施することが理想的である。しかしながら、前述したように、露地栽培はもちろんのこと施設内栽培に於いても、灌水、施肥、植物体生長調節物質の投与を、上記の温度変化に応じて実施するためには、当然に、莫大な費用が必要となる。
【００５８】これに対して、上述した構成を有する本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤は、以下に述べるような特有の機能に基づき、上記の問題点を解消することができる。
【００５９】本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤は、０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率の変化が温度に対し可逆的なハイドロゲル（ないしヒドロゲル）形成性の高分子を含んでいるため、該所定温度領域（０℃以上、７０℃以下の温度範囲）においては、温度の上昇と共に、該高分子を含むハイドロゲル体積の収縮に基づき、該ゲル内部に含有する水、栄養素、および／又は植物体生長調節物質等を該ハイドロゲルの外部（ないしは土壌等からなる他の担体中）に吐き出すことにより、これらの物質を植物体の根から吸収され易い状態とすることが可能である。他方、温度が低下して、植物体における水、養分、生長調節物質の要求性が低下した場合には、上記ハイドロゲル外部ないしは他の担体（土壌等）中に存在するこれらの物質を、該ハイドロゲル（ないしハイドロゲル形成性の高分子）が吸収してその内部に取り込み貯蔵するため、これらの物質が過剰にハイドロゲル外部（ないしは土壌等の他の担体中）に存在することがなくなり、該物質の過剰な存在に基づく植物体への悪影響が効果的に抑制される。
【００６０】本発明の植物体支持体、および土壌改質剤の施用効果は、植物体への水分ストレスが高い環境下（例えば、砂漠、地表剥離面、建造物面、および屋上、建物内部等）において、より好適に発揮される。
【００６１】本発明の支持体ないし土壌改質剤は、植物自体の生長に関与するため、芝生造成、アトリウム（建物内部の露天の中庭）の緑化、砂漠緑化、法面緑化、屋上緑化、壁面緑化等、に好適に応用可能である。本発明の支持体ないし土壌改質剤を種子と一緒に法面、壁面等に吹き付けるた場合においても、該種子周辺において上記した温度変化に対する水分が好適に制御されることにより、その発芽が促進され、発芽後の生長も促進されるため法面等の緑化が極めてスムーズに行われる。
【００６２】更には、実質的に本発明の支持体ないし土壌改質剤のみ（種子を含有しない）を壁面、法面等に吹き付けた場合においても、該壁面等に自然に落下する植物種子の定着、発芽、ないしは発芽後の生長が促進されるため、該壁面等の緑化がスムーズに行われる。
【００６３】次いで、本発明の容器ないしシートについて述べる。
【００６４】前述したように、組織培養や圃場栽培における容器を用いる植物体の発芽ないし育成は、その作業の大部分を人的労働力に依存しており、特に、手作業による移植は、長時間を要するのみならず植物体を傷める原因にもなっている。
【００６５】より具体的には、このような移植の際には、植物体の繁茂した根が容器壁面を圧迫して摩擦が生じているため、該植物体を容器から取り出すのに時間がかかり、且つ植物体自体をも傷める場合が多い。また、移植先の容器に固形の植物支持用担体を充填した後に植物体を移植した場合には、該植物体の根が担体中へ良好に入らないために移植の作業性が低下し、且つ根自体も傷める場合が多い。また、根が伸長した植物体を移植する際、予め保持用担体（例えば水苔）で該植物体を覆ってから容器に植え込んだとしても、移植にはやはり相当の時間を要する。更には、植物体を先に容器の中に入れ、粒状の植物支持用担体を後から該容器中に入れる方法を採用した場合であっても、植物体の初期生長が劣る場合が多い。本発明者の知見によれば、このような初期生長の不良は、該植物体の根と植物体支持用担体との接触面積が少ないことに基づくものと推定されている。
【００６６】これに対して、上述した構成を有する本発明の植物体育成用容器ないしシートを用いた場合には、以下に述べるような本発明の容器ないしシート特有の機能に基づき、上記した従来技術の問題点を解消することができる。
【００６７】すなわち、本発明の植物体育成用の容器の内壁（または、本発明のシートを他の容器の内壁に配置した場合の、該シートの植物体を配置すべき側）には、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子がコーティング等により配置されているために、該容器中に植物体を入れた後に、水または培養液を充填すると、上記ハイドロゲル形成性の高分子が吸水して体積が著しく膨張し、該容器の内腔に充満して該植物体の支持体の少なくとも一部となる（すなわち、ハイドロゲル形成性の高分子が、植物体を支持する機能を発揮ないしは助長する）。
【００６８】本発明においては、上記したような「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」特有の機能に基づき、植物体の移植時に生じる従来技術の問題点、即ち、予め容器内に固形の植物体支持体担体を充填した後に植物体を移植すると、根が担体内に良好に入らないために作業性が低下し、根自体をも傷めるという問題点；更には、植物体を先に容器中に入れた後、従来の固形の植物体支持体担体を入れると、該植物体の根と該担体の接触面積が少ないために初期生長が劣化するという問題点、等が解消される。
【００６９】加えて、容器の内壁にコーティングされているハイドロゲル形成性の高分子として、０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡に吸水率が減少し、且つ該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を用いる本発明の態様においては、例えば、該容器中に植物体を入れ、水または培養液を該容器中に注入して該高分子に吸水させることにより膨潤させ該容器の内腔に充満させて、該高分子を植物体の支持体（の少なくとも一部）として用いて育成することが可能となる。植物体の育成後、該支持体の温度を上げることにより、ハイドロゲル形成性の高分子は脱膨潤（ないし収縮）して、その体積を著しく減じるため、育成された植物体は容易に該容器から取り外しできる。
【００７０】したがって、本発明によれば、上記した従来技術の問題点、すなわち、繁茂した根が容器壁面を圧迫しているため、容器から取り出すために時間がかかり、また根を傷めるという問題点が解消される。
【００７１】従来の植物育成用容器のもう一つの重大な問題点は、前述したように、根圏の環境が植物体の育成にとって好適なものではないということである。特に、容器の材質と密接に関連して、容器の内壁近辺は水分が過多あるいは不足になる傾向があるのみならず、外気温度の影響を受けて寒暖の差が大きい。通常、容器の壁近辺は特に生長根の密度が高く、この付近における根圏の悪環境は、植物体の育成に著しい悪影響を与えることが多い。また、特に容器の底面部は潅水により水過剰の状態になり易く、これとは反対に、該容器の上部は水不足になり易いが、これらの水の不足ないし過剰は、いずれも植物体の育成に悪影響を及ぼす。
【００７２】これに対して、上述した構成を有する本発明の植物体育成用容器ないしシートは、以下に述べるような特有の機能に基づき、上記の問題点を解決することができる。
【００７３】本発明の育成用容器の内壁ないしシートには、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子がコーティング等により配置されており、容器の内壁近辺の支持体（土壌等）が上記した理由で水過剰になると該高分子が吸水してハイドロゲル状態となり、他方、容器の内壁近辺の支持体が水不足になると、該ハイドロゲル粒子から水分が支持体中へ移行する機能を有するため、容器の内壁近辺の根圏における水分環境がほぼ一定に維持されることとなり、上記した従来技術の問題点が解消される。
【００７４】特に、上記のハイドロゲル形成性の高分子として０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を用いる本発明の態様においては、支持体の温度が低温になると該高分子が該支持体中から水分を吸収し、逆に高温になると該高分子から支持体中に水分が放出される。即ち、容器の壁あるいはシートの近傍の支持体中の水分量は、高温になるに従って増加することとなる。一般に、植物体は低温（約５～２０℃未満の温度）時の水分要求性は少なく、高温（約２０以上～３５℃の温度）になるに従って水分要求性が増加するとされており、低温時の水分過剰の場合は根腐れを、高温時の水分不足は生長不良を誘発するとされている。したがって、上記のハイドロゲル形成性の高分子を配置した容器ないしシートを用いた場合には、植物体の根圏環境がより好適に維持されて、植物体の生長の一層の促進が可能となる。
【００７５】更に、植物体育成用の容器の内壁（あるいは容器の内壁に設置されるべきシート）に配置されているハイドロゲル形成性の高分子は、前述したように、水分および／又は栄養分を該高分子の架橋構造内に貯蔵する機能があるため、従来における育成用容器内の「空間」に果たさせていた貯蔵機能を、上記高分子に極めて効率的に「肩代わり」させることが可能となる。よって、本発明によれば、（育成用容器の水分・栄養分の貯蔵能力を一定とした場合でも）該容器の内容積を著しく減らすことが可能となる。
【００７６】このように本発明によれば、従来において「適切」とされていた容器の体積を著しく小さくすることが可能となり、機械的な接触刺激の機会増大による根の発生力の向上が可能となる。更には、容器の内容積の減少自体に基づく効果として、植物体育成用の面積の低減、育成用容器の材料量の低減、運搬コストの低減等が可能となり、加えて、前述したような水管理等の省力化と併せて、著しいコスト低減が可能となる。
【００７７】更に、家庭用の従来の容器は下部が開放系であり、潅水時等に過剰の水が下部の開放部から排出されるため、「受皿」の同時使用が必須であった。この受皿は煩雑であるのみならず、美観を損ね易いものでもあった。
【００７８】これに対して、本発明の植物体育成用容器においては該容器の壁面に貯水能力が付与されているため、容器下部に開放部を設けることは必須でない。すなわち、該容器下部の開放部は、本発明においては省略可能である。このような下部閉鎖系の容器を用いた場合には、従来の家庭用容器（下部が開放系）の上記した問題点は容易に解消される。
【００７９】上記においては、主に発芽後の植物体の育成について述べたが、本発明の容器ないしシートは、発芽前の種子の発芽ないし発芽後の生長に対しても好適に使用可能である。
【００８０】本発明の主要な態様を列挙すれば、以下の通りである。
【００８１】（１）架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含むことを特徴とする植物体栽培用支持体。
【００８２】（２）前記ハイドロゲル形成性高分子の架橋構造中に少なくとも水が保持されて、該高分子を含むハイドロゲルが形成されている上記（１）の植物体栽培用支持体。
【００８３】（３）前記架橋構造内部に栄養素が保持されている上記（１）の植物体栽培用支持体。
【００８４】（４）前記架橋構造内部に植物体生長調節物質が保持されている上記（１）の植物体栽培用支持体。
【００８５】（５）乾燥時の大きさが０．１μｍ～１ｃｍの範囲にあり、且つ形状がマイクロビーズ状、ファイバー状、フイルム状、スポンジ状または不定形のいずれかである請求項１～４のいずれかに記載の植物体栽培用支持体。
【００８６】（６）架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含むことを特徴とする土壌改質剤。
【００８７】（７）前記ハイドロゲル形成性高分子の架橋構造中に少なくとも水が保持されて、該高分子を含むハイドロゲルが形成されている上記（６）の土壌改質剤。
【００８８】（８）前記架橋構造内部に栄養素が保持されている上記（６）の土壌改質剤。
【００８９】（９）前記架橋構造内部に植物体生長調節物質が保持されている上記（６）の土壌改質剤。
【００９０】（１０）乾燥時の大きさが０．１μｍ～１ｃｍの範囲にあり、且つ形状がマイクロビーズ状、ファイバー状、フイルム状、スポンジ状または不定形のいずれかである上記（６）～（９）のいずれかに記載の土壌改質剤。
【００９１】（１１）架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含む土壌改質剤と、植物体支持用担体とを少なくとも含むことを特徴とする植物体栽培用支持体。
（１２）前記植物体支持用担体が、土壌、礫、砂、軽石、炭化物、ピート、バーミキュライト、バーク、パーライト、ゼオライト、ロックウール、スポンジ、水苔、ヤシガラ、およびクリプトモスから選ばれた少なくとも１種類の担体からなる上記（１１）の植物体栽培用支持体。
【００９２】（１３）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、前記植物体支持用担体に対して、乾燥時の重量で０．１～１０ｗｔ. ％添加されてなる上記（１１）の植物体栽培用支持体。
【００９３】（１４）架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含む植物体栽培用支持体を、少なくとも植物体の周囲に配置し、該植物体を支持しつつ栽培することを特徴とする植物体の栽培方法。
【００９４】（１５）下部が閉鎖された容器内で前記栽培を行う上記（１４）の植物体の栽培方法。
【００９５】（１６）植物体支持用担体と、該担体に乾燥時の重量パーセントで０．１～１０ｗｔ. ％添加されてなる土壌改質剤とを含む植物体栽培用支持体を少なくとも植物体の周囲に配置して、該植物体を支持しつつ栽培する植物体の栽培方法であって；前記土壌改質剤が、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子であって；０℃以上、７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化するハイドロゲル形成性の高分子を含むことを特徴とする植物体の栽培方法。
【００９６】（１７）前記栽培を、非無菌的条件下において行う請求項１６または１７記載の植物体の栽培方法。
【００９７】（１８）前記非無菌的条件下における栽培を、露地または施設内で行う請求項１７記載の植物体の栽培方法。
【００９８】（１９）下部が閉鎖された容器内で前記栽培を行う請求項１７記載の植物体の栽培方法。
【００９９】（２０）内部に植物体の少なくとも一部を収容可能とした容器状の基材と、該容器状基材の内部に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含むことを特徴とする植物体育成用容器。
【０１００】（２１）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、容器の内部に固定して保持されてなる上記（２０）の植物体育成用容器。
【０１０１】（２２）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、容器内部に連続した層状で保持されてなる上記（２１）の植物体育成用容器。
【０１０２】（２３）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、容器内部に不連続の状態で保持されてなる上記（２１）の植物体育成用容器。
【０１０３】（２４）上記ハイドロゲル形成性の高分子が粉体ないし粒体状の形態を有し、且つ、その乾燥時の大きさが、０．１μｍ～５ｍｍである上記（２０）の植物体育成用容器。
【０１０４】（２５）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、容器の内部に粘着剤ないし接着剤の層を介して保持されてなる上記（２１）の植物体育成用容器。
【０１０５】（２６）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、０℃以上７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化する高分子である上記（２０）の植物体育成用容器。
【０１０６】（２７）下部が閉鎖されている上記（２０）の植物体育成用容器。
【０１０７】（２８）シート状の基材と、該基材の少なくとも一方の表面上に配置された、架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子とを含むことを特徴とする植物体育成用シート。
【０１０８】（２９）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、基材表面に固定して保持されてなる上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１０９】（３０）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、基材表面に連続した層状で保持されてなる上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１０】（３１）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、基材表面に不連続の状態で保持されてなる上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１１】（３２）上記ハイドロゲル形成性の高分子が粉体ないし粒体状の形態を有し、且つ、その乾燥時の大きさが０．１μｍ～５ｍｍである上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１２】（３３）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、基材の表面上に、粘着剤ないし接着剤の層を介して保持されてなる上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１３】（３４）前記基材のハイドロゲル形成性の高分子が配置された面と反対側の面上に、粘着剤ないし接着剤の層が配置されてなる上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１４】（３５）１つ以上のセルを形成可能なパーティション形状を有する上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１５】（３６）前記ハイドロゲル形成性の高分子が、０℃以上７０℃以下の温度領域で温度上昇と共に平衡吸水率が減少し、且つ、該平衡吸水率が温度に対して可逆的に変化する高分子である上記（２８）の植物体育成用シート。
【０１１６】
【発明の実施の形態】以下、必要に応じて図面を参照しつつ、本発明を詳細に説明する。
（通気性）本発明における植物体育成系の通気性は、該育成系からの「水分蒸発率」により好適に評価することが可能である。本明細書においては、以下により測定される「水分蒸発率」が２４時間当たり３％以下（更には２％以下、特に１％以下）の植物体育成系を「通気制限条件（ないし培養系）」という。この「通気制限条件」は、いわゆる閉鎖系および半閉鎖系のいずれも包含される。
【０１１７】他方、該「水分蒸発率」が２４時間当たり３％を越える（更には５％以上、特に１０％以上の）植物体育成系を「通気非制限条件（ないし開放系）」という。
＜水分蒸発率の測定方法＞植物体育成系を構成する固体成分（例えば、後述する実施例３の系においては、プラントボックスおよび乾燥高分子、重量：Ｗ₁（ｇ））を、精密な秤（例えば、（株）島津製作所製の電子天秤、商品名：ＬＩＢＲＯＲ－ＥＢ－３２００Ｄ）で測定する。次いで、該固体成分に液体成分（実施例３の系においては、ハイポネックス培養液）を加えて、全体の重量（Ｗ₂）を同様に精密な秤で測定する。上記の液体成分の精密な重量は、（Ｘ＝Ｗ₂－Ｗ₁）として計算する。植物体を上記育成系に移植した後、該植物体、固体成分および液体成分を全て含めた育成系全体の重量Ｙを、同様に精密な秤で測定する。
【０１１８】上記全体の重量Ｙを秤量した後、通気性を評価すべき植物体育成系全体を２５℃、湿度３０％の環境下で所定時間放置した後の該育成系全体の重量Ｚ（例えば、１日（２４時間）後のＺｄ、１週間（７日間）後の重量Ｚｗ、および／又は１ケ月（３０日間）後の重量Ｚｍ）を測定する。このようにして求めた重量Ｚを用いて下記の計算式により水分蒸発率を求める。
【０１１９】水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｄ）／Ｘ、水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｗ）／（Ｘ×７）、又は、水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｍ）／（Ｘ×３０）
（ハイドロゲル形成性の高分子）本発明の容器内部に配置される「ハイドロゲル形成性の高分子」とは、架橋（crosslinking）構造ないし網目構造を有し、該構造に基づきその内部に水を保持することにより、ハイドロゲルを形成可能な性質を有する高分子をいう。また、「ハイドロゲル」とは、高分子からなる架橋ないし網目構造と、該構造中に支持ないし保持された（分散液体たる）水とを少なくとも含むゲルをいう。
【０１２０】架橋ないし網目構造中に保持された「分散液体」は、水を主要成分として含む液体である限り、特に制限されない。より具体的には例えば、分散液体は、水自体であってもよく、また、水溶液、および／又は含水液体（例えば、水と一価ないし多価アルコール等の混合液体）のいずれであってもよい。
【０１２１】本発明においては上記ハイドロゲル形成性の高分子として、水溶性または親水性の高分子化合物を架橋して得られたものを用いることが好ましい。このような架橋された高分子は、水溶液中で吸水し、膨潤はするが溶解しないという性質を有している。上記した水溶性または親水性の高分子化合物の種類、および／又は架橋率を変化させることによって、後述する平衡吸水率を変化させることが可能である。
（水溶性または親水性高分子化合物）本発明において支持体を構成するハイドロゲルを与えるべき水溶性または親水性高分子化合物としては、メチルセルロース、デキストラン、ポリエチレンオキサイド、ポリプロピレンオキサイド、ポリビニルアルコール、ポリＮ－ビニルピロリドン、ポリビニルピリジン、ポリアクリルアミド、ポリメタアクリルアミド、ポリＮ－メチルアクリルアミド、ポリヒドロキシメチルアクリレート、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリビニルスルホン酸、ポリスチレンスルホン酸およびそれらの塩、ポリＮ，Ｎ－ジメチルアミノエチルメタクリレート、ポリＮ，Ｎ－ジエチルアミノエチルメタクリレート、ポリＮ，Ｎ－ジメチルアミノプロピルアクリルアミドおよびそれらの塩などがあげられる。
【０１２２】本発明においては、上記ハイドロゲル形成性の高分子を構成する高分子として、水に対する溶解度温度係数が負であるか、および／又はＬＣＳＴ（下限臨界共溶温度、Lower Critical Solution Temperature ）を有する高分子化合物を、更に化学架橋してなるものが、特に好適に使用可能である。ここに、ＬＣＳＴとは、高分子が温度の上昇により水溶性から疎水性に変化する過程で、該高分子が最終的に水に不溶化して沈澱する温度をいう。この際の水溶性－疎水性変化の現象は、温度に対して可逆的である（Haskins,M., et al., J. Macromol. Sci. Chem. A2(8) ; 1441, 1968）。
【０１２３】上記「ＬＣＳＴを有する高分子化合物」としては、はポリ－Ｎ－イソプロピルアクリルアミド（ＰＮＩＰＡＡｍ）が典型的な例として挙げられる。このＰＮＩＰＡＡｍの水溶液においては、低温域ではＰＮＩＰＡＡｍ分子と水分子との間に水素結合による水和物（オキソニウムヒドロキシド）が形成されるため、該ＰＮＩＰＡＡｍは水溶性を示す。一方、高温域では上記ＰＮＩＰＡＡｍ分子－水分子間の水素結合が弱まり、上記水和物が分解し脱水和する傾向を示すために、ＰＮＩＰＡＡｍ分子は疎水性に変化する。
【０１２４】上記の「ＬＣＳＴを有する高分子化合物」に化学架橋を付与すると、水溶液中で該ＬＣＳＴより低い温度でも溶解することなく膨潤する。このような膨潤状態で温度を高めると、該高分子化合物は疎水性に変化していくため、膨潤した該架橋体（ハイドロゲル）から水が分離される。
【０１２５】上述したように、上記ハイドロゲルの平衡吸水率は、温度の上昇と共に著しく減少する傾向を有し、且つ、この平衡吸水率の温度変化は可逆的である。したがって、本発明において該ハイドロゲル形成性の高分子を容器内に配置して用いた場合、該ハイドロゲル中に存在する水（場合によっては、このような水に溶解している状態にある栄養素、および／又は、植物体生長調節物質等）は、温度の上昇と共にハイドロゲルから該ゲルの外部へ（ないしは後述する多孔体、土壌等の他の担体中に）押し出される。一方、温度が低下すると、水はゲル外部（ないしは多孔体、土壌等の他の担体中）から、再び該ハイドロゲル中に吸い込まれる。
【０１２６】本発明の容器を構成するハイドロゲル形成性高分子のＬＣＳＴは０℃以上７０℃以下（更には１０℃以上５０℃以下）であることが好ましい。このＬＣＳＴが０℃より低い場合には、低温環境下（例えば、温度１０℃以下の環境下）におけるハイドロゲル形成性高分子の水分保持性が低下し易い。一方、ＬＣＳＴが７０℃を越えると、高温環境下（例えば、温度３０℃以上の環境下）におけるハイドロゲル形成性高分子の水分の放出性が低下し易い。
（平衡吸水率）
＜平衡吸水率Ｅ_a の測定＞ハイドロゲル形成性高分子を、所定の温度で、大過剰の水（イオン交換水）中に少なくとも３日間浸漬し、充分に膨潤させて該高分子の膨潤が平衡に達した後、ハイドロゲル（すなわち、高分子＋水）の重量（Ｗ）を測定する（この「膨潤の平衡」については、例えば文献T. Tanaka 、et al.，Phys. Rev. Lett., 55,2455 (1985)を参照することができる）。
【０１２７】次に、該ハイドロゲルを１００℃で少なくとも３日間真空乾燥させた後、乾燥ハイドロゲル（すなわち、高分子）の重量（Ｐ）を測定する。このようにして測定された２つの重量（ＷおよびＰ）に基づき、平衡吸水率Ｅ_a は、下記の式によって定義される。
【０１２８】平衡吸水率（Ｅ_a ）＝｛（Ｗ－Ｐ）／Ｐ｝×１００（％）
（平衡吸水率Ｅ_a の温度依存性および塩濃度依存性）本発明に用いるハイドロゲル形成性の高分子においては、低温環境下におけるハイドロゲル形成性の高分子の水分保持性の点からは、低温時（５℃）における平衡吸水率（Ｅ_L ）は、１, ０００％以上程度、更には３, ０００％以上程度、特に５, ０００％以上程度（例えば、５, ０００～１００, ０００％程度）であることが好ましい。一方、該高分子の高温環境下における水分放出性の点からは、該高分子の高温時（５０℃）における平衡吸水率（Ｅ_H ）は、６, ０００％以下程度、更には３, ０００％以下程度、特に１, ０００％以下程度（例えば、１, ０００～５００％程度）であることが好ましい。
【０１２９】上記高分子の水分保持性－水分吸収性のバランスの点からは、高温および低温時におけるこれらの平衡吸水率の比（Ｅ_L ／Ｅ_H ）は、２以上程度、更には５以上程度、特に１０以上程度（例えば、１０～２００程度）であることが好ましい。
【０１３０】本発明においてハイドロゲル形成性の高分子は、平衡吸水率の塩濃度依存性が、一般の高吸水性ポリマー（例えば、アクリル酸ナトリウム系重合体が架橋されたもの）に比べて小さい。より具体的には、本発明に用いるハイドロゲル形成性高分子においては、１５℃において、ＮａＣｌ濃度０％（イオン交換水）における平衡吸水率Ｅ_a をＥ_N とし、ＮａＣｌ濃度３ｗｔ. ％における平衡吸水率Ｅ_aをＥ_S とした場合、これらの平衡吸水率の比（Ｅ_N ／Ｅ_S ）は、２０以下であることが好ましく、１０以下（特に５以下）であることが更に好ましい。
（ＬＣＳＴを有する高分子）本発明における「ＬＣＳＴを有する高分子化合物」としては、ポリＮ－置換アクリルアミド誘導体、ポリＮ－置換メタアクリルアミド誘導体、及びこれらのポリＮ－置換アクリルアミド誘導体／ポリＮ－置換メタアクリルアミド共重合体、ポリビニルメチルエーテル、ポリプロピレンオキサイド、ポリエチレンオキサイド、エーテル化メチルセルロース、ポリビニルアルコール部分酢化物等が、必要に応じて各種の共重合体および／又は混合物として好適に使用可能である。これらの中でも、ポリＮ－置換アクリルアミド誘導体またはポリＮ－置換メタアクリルアミド誘導体、またはＮ－置換アクリルアミド誘導体／ポリＮ－置換メタアクリルアミド共重合体が、本発明において特に好ましく使用可能である。
【０１３１】本発明において好ましく用いられる高分子化合物の具体例を、以下にＬＣＳＴが低い順に列挙する。ポリ－Ｎ－アクリロイルピペリジン；ポリ－Ｎ－ｎ－プロピルメタアクリルアミド；ポリ－Ｎ－イソプロピルアクリルアミド；ポリ－Ｎ，Ｎ－ジエチルアクリルアミド；ポリ－Ｎ－イソプロピルメタアクリルアミド；ポリ－Ｎ－シクロプロピルアクリルアミド；ポリ－Ｎ－アクリロイルピロリジン；ポリ－Ｎ，Ｎ－エチルメチルアクリルアミド；ポリ－Ｎ－シクロプロピルメタアクリルアミド；ポリ－Ｎ－エチルアクリルアミド；上記の高分子は単独重合体（ホモポリマー）であってもよく、また上記重合体を構成する単量体と、他の単量体との共重合体であってもよい。このような共重合体を構成する他の単量体としては、親水性単量体、疎水性単量体のいずれを用いることもできる。
【０１３２】上記親水性単量体としては、Ｎ－ビニルピロリドン、ビニルピリジン、アクリルアミド、メタアクリルアミド、Ｎ－メチルアクリルアミド、ヒドリキシエチルメタアクリレート、ヒドロキシエチルアクリレート、ヒドロキシメチルメタアクリレート、ヒドロキシメチルアクリレート、酸性基を有するアクリル酸、メタアクリル酸及びそれらの塩、ビニルスルホン酸、スチレンスルホン酸等、並びに塩基性基を有するＮ，Ｎ－ジメチルアミノエチルメタクリレート、Ｎ，Ｎ－ジエチルアミノエチルメタクリレート、Ｎ，Ｎ－ジメチルアミノプロピルアクリルアミド及びそれらの塩等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【０１３３】一方、上記疎水性単量体としては、エチルアクリレート、メチルメタクリレート、ブチルメタクリレート、グリジルメタクリレート等のアクリレート誘導体およびメタクリレート誘導体、Ｎ－ｎ－ブチルメタアクリルアミド等のＮ－置換アルキルメタアクリルアミド誘導体、塩化ビニル、アクリロニトリル、スチレン、酢酸ビニル等が挙げられるが、これに限定されるものではない。
【０１３４】一般的には、上記高分子化合物に親水性単量体を共重合することにより、ＬＣＳＴを上昇させることが可能となり、一方疎水性単量体を共重合することにより、ＬＣＳＴを下降させることが可能となる。
【０１３５】上述したＬＣＳＴは、本発明のハイドロゲル形成性高分子の平衡吸水率の温度依存性を決定する因子の一つとして捉らえることが可能である。すなわち、上記したような「共重合体成分」を選択することによっても、ＬＣＳＴないしハイドロゲル平衡吸水率の温度に対する依存性をコントロールすることができる。（架橋）上記したような高分子化合物に架橋構造を付与ないし導入する方法としては、該高分子化合物を与えるべき単量体を重合する際に架橋構造を導入する方法と、該単量体の重合終了後に架橋構造を導入する方法とが挙げられるが、本発明においては、これらのいずれの方法も使用可能である。
【０１３６】前者の（単量体重合時の架橋導入）方法は、通常、二官能性単量体（あるいは３以上の官能基を有する単量体）を共重合することにより実施可能である。例えば、Ｎ，Ｎ－メチレンビスアクリルアミド、ヒドロキシエチルジメタクリレート、ジビニルベンゼン等の二官能性単量体が好適に使用できる。
【０１３７】後者の（単量体重合終了後の架橋導入）方法は、通常、光、電子線、γ線照射等により分子間に架橋を形成することにより実施可能である。
【０１３８】また、このような後者の方法は、例えば、高分子化合物中の官能基（例えばアミノ基）と結合しうる官能基（例えば、イソシアネート基）を分子内に複数個有する多官能性分子を架橋剤として用いて、該高分子化合物を架橋させることによっても実施可能である。
【０１３９】本発明におけるハイドロゲル形成性高分子の平衡吸水率（特にＬＣＳＴより低い低温領域における平衡吸水率）は、上記の架橋構造、特に架橋密度に依存し、一般に架橋密度が低い程、平衡吸水率が大きくなる傾向がある。ＬＣＳＴより高い高温領域における平衡吸水率に対しては、架橋密度の影響の程度は比較的小さい傾向があるため、架橋密度が低い程、平衡吸水率の温度依存性も大きくなる傾向がある。
【０１４０】このような「架橋密度」は前者の方法においては、例えば、二官能性単量体の共重合比を変えることで、後者の方法においては、例えば、光、電子線、γ線等の照射量を変えることで、任意に所望の程度に制御することが可能である。
【０１４１】本発明においては、架橋密度は、全単量体に対する分岐点のモル比で、約０．０２ｍｏｌ％～約１０ｍｏｌ％、更には約０．０５ｍｏｌ～約４ｍｏｌ％の範囲にあることが好ましい。前者の（重合時の架橋導入）方法により架橋構造を導入する場合、二官能性単量体の全単量体（該二官能性単量体自体をも含む）に対する共重合重量比は、約０．０３ｗｔ. ％～約３ｗｔ. ％（更には約０．０５ｗｔ. ％～約１．５ｗｔ. ％）の範囲であることが好ましい。
【０１４２】本発明において架橋密度が約１０ｍｏｌ％を越える場合には、本発明のハイドロゲル形成性の高分子の平衡吸水率の温度依存性が小さくなるために、本発明のハイドロゲル形成性の高分子の吸水－水放出の効果が小さくなる。一方、架橋密度が約０．０２ｍｏｌ％未満の場合には、該ハイドロゲル形成性の高分子の機械的強度が弱くなり、取扱いが困難になると同時に、温度変化に伴う膨潤、収縮過程での機械的破損が生ずる可能性が大きくなる。
【０１４３】上述したような架橋密度（全単量体に対する分岐点のモル比）は、例えば、¹³Ｃ－ＮＭＲ（核磁気共鳴吸収）測定、ＩＲ（赤外吸収スペクトル）測定、または元素分析によって定量することが可能である。（ハイドロゲルないし高分子の形状）本発明の容器内に配置されるハイドロゲルないしハイドロゲル形成性高分子の形状は特に限定されず、植物体の種類、育成方法等によって適宜、選択することが可能である。該ハイドロゲルないし高分子の形状は、例えば層状、マイクロビーズ状、ファイバー状、フイルム状、不定形等の種々の形状をとることが可能である。
【０１４４】本発明におけるハイドロゲルないし高分子の大きさも、植物体の種類、栽培方法等によって適宜、選択することが可能である。温度変化に対する該ハイドロゲル形成性の高分子の平衡吸水率の変化過程、即ち膨潤及び収縮過程の温度に対する追従性を高める点からは、該ハイドロゲルないし高分子の単位体積当たりの表面積を大きくする、即ちハイドロゲルないし高分子１物体（例えば、１粒）当たりの大きさを小さくすることが好ましい。例えば、本発明におけるハイドロゲルないし高分子の大きさは、乾燥時で０．１μｍ～１ｃｍ程度の範囲であることが好ましく、１μｍ～５ｍｍ程度（特に１０μｍ～１ｍｍ程度）であることが更に好ましい。
【０１４５】本発明において、上記したハイドロゲルないし高分子の「乾燥時の大きさ」とは、該ハイドロゲルないし高分子の最大径（最大寸法）の平均値（少なくとも１０個以上計測した値の平均値）をいう。より具体的には、本発明においては、例えば上記ハイドロゲルないし高分子の形状に対応して、以下のサイズを「乾燥時の大きさ」として用いることができる。
【０１４６】マイクロビーズ状：粒径（平均粒径）
ファイバー状：各繊維状片の長さの平均値フイルム状、不定形状：各片の最大寸法の平均値層状：高分子層の厚さ本発明においては、上記の「最大値の平均値」に代えて、各片の体積の平均値（少なくとも１０個以上計測したときの平均値）と等しい体積を有する「球」の直径を、上記ハイドロゲルないし高分子の「乾燥時の大きさ」として用いてもよい。
（ハイドロゲル／高分子の成形方法）本発明のハイドロゲルないし高分子を成型する方法は、特に制限されず、該ハイドロゲルないし高分子の所望の形状に応じて、通常の高分子化合物の成型法を用いることができる。
【０１４７】最も簡便な成形方法としては、水溶性または親水性高分子化合物を与えるべき単量体、前述した多官能性単量体（二官能性単量体等）、及び重合開始剤を水中に溶解し、熱あるいは光によって該単量体等を重合させ、ハイドロゲルないし高分子を生成させることが可能である。該ハイドロゲルないし高分子を機械的に破砕し、未反応単量体、残存開始剤等を水洗等により除去した後、乾燥することにより、本発明の容器ないしシートを構成するハイドロゲル形成性高分子を得ることができる。
【０１４８】また、水溶性または親水性高分子化合物を与える単量体が液状の場合は、該単量体中に多官能性単量体及び重合開始剤を添加し、熱あるいは光によって該単量体をバルク重合させた後、機械的に破砕し、未反応単量体及び残存多官能性単量体を水で抽出する等の方法により除去し、乾燥することによっても、本発明に用いるハイドロゲルないし高分子を得ることができる。
【０１４９】一方、マイクロビーズ状のハイドロゲルないし高分子を得る場合には、乳化重合法、懸濁重合法、沈澱重合法等を用いることが可能である。本発明においては、粒径制御の点からは、逆相懸濁重合法が特に、好ましく用いられる。このような逆相懸濁重合法においては、単量体及び生成高分子を溶解しない有機溶媒（例えばヘキサン等の飽和炭化水素）が分散媒として好ましく用いられる。また懸濁助剤として界面活性剤（例えば、ソルビタン脂肪酸エステル等の非イオン性界面活性剤）を、上記した有機溶媒と共に用いてもよい。
【０１５０】得られるマイクロビーズの粒径は、添加する界面活性剤の種類・量、あるいは攪拌速度等により制御することが可能である。重合開始剤としては、水溶性開始剤、非水溶性開始剤のいずれも使用可能である。
【０１５１】本発明において、ハイドロゲルないし高分子をファイバー状、フイルム状等に成型する場合には、例えば、水溶性高分子化合物の水溶液を、口金等を用いて水と混合しない有機溶媒中に押し出して、該高分子に所望の形状を付与した後、光、電子線、γ線等を照射することにより、高分子に架橋構造を付与する方法を用いればよい。また、例えば上記水溶性高分子化合物を有機溶媒あるいは水に溶解し、ソルベントキャスティング法により成型した後、光、電子線、γ線等を照射し、該高分子に架橋構造を付与してもよい。
（添加剤）本発明の植物体栽培用支持体、土壌改質剤、容器ないしシートを構成するハイドロゲル形成性高分子の架橋構造中には、必要に応じて、少なくとも水が保持されてハイドロゲルが形成されているが、該ハイドロゲルないし高分子中には、必要に応じて、他の添加剤を添加してもよい。このような目的でハイドロゲルないし高分子内部に含有させる添加剤としては、通常の露地ないし施設内（温室等）における植物栽培において通常使用可能な公知の添加剤を、特に制限なく使用することが可能である。
【０１５２】このような公知の添加剤としては、各種の植物用栄養素、栄養素以外の植物体の栽培に関与する物質（植物体生長調節物質、植物体生長促進物質、植物体矮化剤等）、あるいは農薬（除草剤、殺虫剤、殺菌剤等）が挙げられる。
（栄養素）必要に応じて本発明のハイドロゲルないし高分子内部に含有させることが可能な栄養素としては、Ｎ、Ｐ、Ｋ、Ｃａ、Ｍｇ、Ｓ等の多量元素、および／又はＦｅ、Ｃｕ、Ｍｎ、Ｚｎ、Ｍｏ、Ｂ、Ｃｌ、Ｓｉ等の微量元素が挙げられる。
【０１５３】上記の元素が含まれる無機栄養素または有機栄養素を本発明のハイドロゲルないし高分子内部に含有させた場合、温度上昇と共に植物体の要求性が高くなる該栄養素を該ハイドロゲルないし高分子の外部（例えば、土壌中等）に放出し、一方該要求性が低くなる低温時には、該栄養素がハイドロゲルないし高分子内部に貯蔵されるため、栄養素の持続性を著しく改善することが可能となる。
【０１５４】これらの栄養素を該ハイドロゲルないし高分子内部に含有させる方法としては、例えば尿素、硝酸カルシウム、硝酸カリウム、リン酸第二水素カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄等の水溶液をＬＣＳＴより低い温度に冷却し、該水溶液中に乾燥した上記ハイドロゲルないし高分子自体を浸漬して膨潤させ、結果として生成したハイドロゲルないし高分子中に、所望の栄養素を吸収させる方法等が挙げられる。
（植物成長物質等）上記した栄養素以外の植物体の栽培に関与する物質として、植物体生長調節物質、植物体生長促進物質、植物体矮化剤等、あるいは農薬（除草剤、殺虫剤、殺菌剤等）をも、必要に応じて上記ハイドロゲルないし高分子中に含有させてもよい。
【０１５５】一般に、高温過湿条件下の作物栽培は、茎部徒長、あるいは分枝・開花不良等の現象を引き起こし、農産物としての価値を低下させる原因となり易い。また、品種特性によってもこのような価値低下の問題が生ずる場合がある。このような場合、茎等の伸長を抑制して分枝や開花を促進する効果を有する矮化剤を、必要に応じて使用することが好ましい。本発明において、矮化剤をハイドロゲルないし高分子内部に含有させた場合、該ハイドロゲルないし高分子を構成要素として含む本発明の植物体栽培用支持体、土壌改質剤、容器ないしシートは、高温時に該容器ないしシートから矮化剤を外部（例えば、土壌中等）に放出し、植物体の茎部伸長を抑制する。一方、矮化剤の要求性が低くなる低温時には、該矮化剤は該ハイドロゲルないし高分子から放出されず、矮化剤の効果の持続性が著しく改善される。
【０１５６】一般に、除草剤の必要性も、高温時には低温時と比較して高い。したがって、除草剤を本発明のハイドロゲルないし高分子内部に含有させた場合、上記と同様の貯蔵－放出のメカニズムに基づき、該除草剤の効果、及びその持続性が著しく改善される。
（添加剤の含有方法）上記した各種の添加剤をハイドロゲルないし高分子内部に含有させる方法としては、該添加剤の水溶液中に、高分子のＬＣＳＴより充分に低い温度で、該高分子を浸漬して上記水溶液を吸収させて、ハイドロゲルないし高分子を生成させる方法が挙げられる。また、例えばイナベンフィド、ウニコナゾールのように水への溶解度が著しく低い生長調節物質（矮化剤等）を用いる場合には、該生長調節物質が可溶で且つハイドロゲルないし高分子が膨潤する有機溶媒を用いて、該ハイドロゲルないし高分子内部に、該生長調節物質を実用的な濃度で含有させることも可能である。
（植物体栽培用支持体の使用方法）本発明の植物体栽培用支持体は上記したハイドロゲルないし高分子からなり、一般的に植物体の栽培に使用される温度の範囲（例えば、１５～３５℃程度の範囲）内において、ゲル構造に基づく適度な「硬さ」ないし形状保持性を有することが可能である。より具体的には例えば、図１の模式断面図に示すように、土壌あるいは他の栽培用担体を併用することなく、適宜容器１の内部に配置した本発明の植物体栽培用支持体２を単独ないし単体で使用して、植物体３を栽培すればよい。
（土壌改質剤の使用方法）一方、植物体栽培の容易性ないし栽培コスト等を考慮して、上記したハイドロゲルないし高分子を土壌改質剤としても用いてもよい。このような場合には、本発明の土壌改質剤を、他の植物体栽培用担体に適宜添加して使用すればよい。より具体的には例えば、図２の模式断面図に示すように、本発明の土壌改質剤２ａを他の植物栽培用担体（土壌等）５に対して略均一に添加して植物体支持体４とし、このようにして得た植物体支持体４を適宜容器１の内部に配置して、植物体３を栽培すればよい。
【０１５７】上記したように本発明の土壌改質剤と併用可能な「他の植物体栽培用担体」の種類、使用割合等は特に制限されない。このような植物体栽培用担体としては、例えば、土壌あるいは礫、砂、軽石、炭化物、ピート、バーミキュライト、バーク、パーライト、ゼオライト、ロックウール、スポンジ、水苔、ヤシガラ、クリプトモス等が、単独で、あるいは必要に応じて２種以上混合して、好適に使用可能である。
【０１５８】本発明の土壌改質剤を用いて植物体を栽培する場合は、上記した土壌等からなる「他の植物体栽培用担体」に対して、本発明のハイドロゲルないし高分子からなる土壌改質剤を、混合割合が乾燥時の重量パーセントで０．１～１０ｗｔ. ％程度（更には０．３～３ｗｔ. ％程度）となるように混合することが好ましい。また、植物体３を土壌等の通常の植物体栽培用担体へ移植する際に、図３の模式断面図に示すように、該植物体３の根３ａに本発明の土壌改質剤２ａを物理的に付着させた後、上記した植物体栽培用担体（土壌等）５中に埋植し（根３ａを植物体栽培用担体５中に埋め）て栽培してもよい。
【０１５９】更には、図４の模式断面図に示すように、通常の植物体栽培用担体（土壌等）５に植物体３を埋植した後、本発明の土壌改質剤２ａを散布して栽培を行ってもよい。
（植物体）本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤が適用可能な植物体は、露地栽培ないし施設（温室等）内栽培が可能である限り特に制限されず、植物体（例えば、苗）であっても、植物体の一部（例えば、茎）であってもよい。露地栽培ないし施設（温室等）内栽培時の効率ないし歩留りの点からは、培養室（通常は無菌的条件下）においてある程度生長させた植物体を、本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を用いた栽培に適用することが好ましい。
（栽培条件）本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤は、「培養」条件下で用いることも可能であるが、むしろ「栽培」条件下で好適に使用可能である。
【０１６０】本明細書において、植物体の「培養」においては、通常、ガラス器内（in vitro）、無菌的条件下で、植物体の一部ないし全部を、育成、再生ないし継代することが多い（このような「培養」の一態様については、例えば、農学大事典編集委員会編「農学大事典」、１０２４頁（１９９１年）、養賢堂、を参照することができる）。この「培養」は、植物体生長条件が実質的に一定（例えば、温度２５℃、照度３０００ルクス、１６ｈｒ日長）に保持された培養室内において、行われる場合が多い。
【０１６１】一方、植物体の「栽培」においては、通常、非無菌的条件下において、植物体の一部ないし全部を生長させることが多い。この「栽培」においては、通常、外的環境因子（温度、湿度、日射量、光強度等）の変動によって、植物体の生長条件が変動する。
【０１６２】また、植物の順化等を目的として、「培養」条件を「栽培」条件に近づける（例えば、昼夜の温度差がある温室や、昼間２５℃、夜間１９℃、温度差６℃に設定した培養室等を用いる）場合がある。更に、「栽培」条件を植物に対して好適に制御するために、「培養」条件に近づける（例えば、培養室内における非無菌的状態での容器栽培）場合もある。
【０１６３】本発明の「栽培」においては、非無菌的条件下において植物体を生長させる限り、植物体を収容すべき容器、栽培場所等の他の条件の如何を問わない。より具体的には例えば、栽培用の容器の形状は特に制限されず、ポット等の公知の形状の容器を適宜使用することが可能である。該容器を構成する材料も特に制限されず、紙、プラスチック、陶磁器、ガラス等の公知の材料を適宜使用することが可能である。栽培場所も特に制限されず、露地等の開放系（open-air）の場所；温室、植物工場、培養室を始めとする施設等を適宜使用することが可能である。
【０１６４】本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤は、上述したように無菌的条件下および非無菌的条件下で共通して使用することも可能であるため、本発明の植物体栽培用支持体ないし土壌改質剤を用いた場合、植物体の培養から栽培までを共通の栽培用支持体ないし土壌改質剤を用いて行うことも可能となる。このように共通の栽培用支持体ないし土壌改質剤を用いる培養から栽培への移植の操作においては、必要に応じて、ハイドロゲルないし高分子内部に保持ないし含有させるべき媒体（水分、および／又は、他の栄養素等の成分）の全部あるいは一部を、（ハイドロゲル形成性高分子自体を植物体に付着させたまま）該ハイドロゲル形成性高分子の上記した温度感応性を利用して交換することが可能であるため、該移植に際しての植物体ないしその一部（例えば、根）の損傷を効果的に防止することが可能である。
（容器／シートの形状および材質）上述した「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」がその内部に配置されている限り、本発明の植物体育成用容器の形状は特に制限されず、従来から公知の形状、例えば、鉢状、ポット状、プランター状、トレー状等の種々の形状とすることが可能である。
【０１６５】本発明の育成用容器の一態様（鉢型）を、図５の模式断面図に示す。図５を参照して、底部１１ａと側壁部１１ｂとを有する鉢型容器１１の内部に、「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」からなる層１２が配置されている。この底部１１ａまたは側壁部１１ｂには、必要に応じて、１個以上の穴（図示せず）が設けられていてもよいことは、言うまでもない。
【０１６６】同様に、上述した「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」がその表面の少なくとも一部の表面上に配置されている限り、本発明の植物体シートの形状は特に制限されず、従来から公知の種々の形状をとることが可能である。
【０１６７】本発明の育成用シートの一態様を、図６の模式断面図に示す。図６を参照して、シート基材２１ａの一方の表面上に、「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」からなる層１２ａが配置されている。このシート基材２１ａの高分子層１２ａ配置面と反対側の面（裏面）には、必要に応じて、粘着剤ないし接着剤の層１３（カルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ）等からなる）が設けられていてもよい。更に、図７に示すように、この粘着剤／接着剤の層１３上には、必要に応じて、離型性を有するシート１４が配置されていてもよい。この図７に示したような態様のシート２１を用いた場合には、離型性シート１４を剥がしてから該シート２１を従来の容器（図示せず）内に配置することにより、該従来の容器の所望の位置にシート２１を配置することが容易となる。
【０１６８】本発明のシートは、必要に応じて、パーティション（中仕切り）の形状としてもよい。
【０１６９】図８の模式斜視図に、パーティション形状とした本発明のシートの態様の例を示す。図８（ａ）は、単一セル型（延長部付き）のパーティション形状の例を示し、図８（ｂ）は、４一セル型のパーティション形状の例を示す。これらのパーティションによって形成されるべき「セル」の数は特に制限されないが、栽培面積の有効利用ないし効率の点からは、１～１００００個程度（更には、１０～１０００個程度）であることが好ましい。これらのパーティション型の本発明のシート２２においては、「架橋構造を有するハイドロゲル形成性の高分子」からなる層（図示せず）は、該パーティションの植物体を配置すべき側の表面１５の少なくとも一部に配置される。
【０１７０】図９の模式平面図に示すように、パーティション形状とした本発明のシート２２を「他の容器」１６（従来の容器でもよい）と組合せて用いた場合、該シート２２と「他の容器」１６との着脱を利用することにより、植物体の移植時の「取り外し」が極めて容易となる。すなわち、生長させた植物体（図示せず）を容器６ないしシート１２から取り外す際に、予め容器６からパーティション２２を抜き取ることにより、植物体の「取り外し」が極めて容易となる。上記「他の容器」１６は、従来の容器であってもよく、また、必要に応じて、その内部に「ハイドロゲル形成性の高分子」の層１２が配置された植物体育成用容器（すなわち、本発明の容器）であってもよい。
【０１７１】本発明の容器ないしシートの材質も特に制限されず、従来から公知の材質、例えば、セラミックないし陶器（素焼等）、金属、木材、プラスチック、紙、等の種々の材質を適宜使用することが可能である。
（高分子の配置の態様）本発明においては、ハイドロゲル形成性の高分子が育成用容器内に配置されている限り、その位置、面積、形状（例えば、連続した層であるか、断続的な層であるか）、配置の手段は特に制限されない。
【０１７２】上記高分子の容器内での配置の位置は、例えば、容器の底面１１ａないし側面１１ｂ（図５）のいずれであってもよいが、該高分子の膨潤による植物体の保持を容易とする点からは、該高分子は容器の側面１１ｂに配置されていることが好ましい。
【０１７３】本発明において、ハイドロゲル形成性の高分子の機能を効率的に発揮させる点からは、容器の内表面の面積（または、シートの一方の表面の面積）をＳ_a とし、ハイドロゲル形成性の高分子が配置された面積をＳ_p とした場合、これらの面積の比（Ｓ_p ／Ｓ_a ）×１００は、約１０％以上であることが好ましく、更には約５０％以上（特に約７０％以上）であることが好ましい。
【０１７４】本発明において、ハイドロゲル形成性の高分子の層１２ないし１２ａは、連続した層であってもよく、また断続的な層であってもよい。このような断続的な層は、スクリーン印刷等の任意の手段により容易に形成可能である。断続的な層とする場合、その平面形状は図１０（ａ）に示すような格子島状、図１０（ｂ）に示すような斑点状等の任意の形状とすることができる。
【０１７５】ハイドロゲル形成性の高分子の層１２ないし１２ａを容器ないしシートの基材１１上に配置する場合、その配置の態様は特に制限されない。該配置の容易性の点からは、例えば、基材１１上に直接に高分子層１２を配置する態様（図１１（ａ））、基材１１上に配置した粘着剤ないし接着剤の層１７の上に、高分子層１２を配置する態様（図１１（ｂ））、基材１上に配置した粘着剤ないし接着剤の層１７の上に、粒子状、不定型状等の任意の形状とした高分子１２を配置する態様（図１１（ｃ））のいずれも好適に用いられる。上記した図１１（ａ）の態様において、高分子層１２の基材１１に対する接着性を付与ないし増強する点からは、必要に応じて、ハイドロゲル形成性の高分子を粘着剤ないし接着剤に混合ないし分散した後に、上記高分子層１２としてもよい。この場合、ハイドロゲル形成性の高分子の１０重量部に対して、粘着剤ないし接着剤を０．０１～１０重量部程度（更には０．１～２重量部程度）用いることが好ましい。
【０１７６】上記「粘着剤ないし接着剤」としては、公知の接着剤、粘着剤等を特に制限なく使用することができるが、該物質は、栽培する植物に対して実質的に無毒であるか、あるいは低毒性のものを使用することが好ましい。このような接着剤・粘着剤の具体例として、例えば、ゴムないしラテックス系（天然ゴム系、イソプレンラテックス系等）、アクリル樹脂系（アクリル系、シアノアクリレート系等）、エポキシ樹脂系、ウレタン樹脂系、タンパク質系（大豆タンパク系、グルテン系等）、デンプン系（デンプン系、デキストリン系）、セルロース系（ＣＭＣ系、ニトロセルロース系等）の接着剤ないし粘着剤を挙げることができる。
【０１７７】上記した容器ないしシートのいずれの態様においても、ハイドロゲル形成性の高分子の機能を効率的に発揮させる点からは、容器の内表面の面積（または、シートの一方の表面の面積）をＳ_a とし、配置されたハイドロゲル形成性の高分子の重量をＭ_p とした場合、該高分子の塗布量（Ｍ_p ／Ｓ_a ）は、０．０００１ｇ／ｃｍ² （０．１ｍｇ／ｃｍ² ）以上であることが好ましく、更には０．００１ｇ／ｃｍ² （１ｍｇ／ｃｍ² ）～０．２ｇ／ｃｍ² 程度（特に０．００２ｇ／ｃｍ² （２ｍｇ／ｃｍ² ）～０．１ｇ／ｃｍ² 程度）であることが好ましい。
（植物体育成用容器ないしシートの製造方法）ハイドロゲルが基材表面に固定された成型物（容器ないしシート）を製造する方法は特に制限されないが、例えば、以下の２つの方法のいずれかが好適に使用可能である。
【０１７８】第一の方法は、基材となる材料をあらかじめポットや、プランター等の容器ないしシートの形状に成型した後、該成型物の内表面となるべき面に、接着剤、粘着剤等のハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定する機能を有する物質を塗布し、このように塗布した物質の上にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定する方法である。
【０１７９】第二の方法は、基材となる材料のシート又はフィルム表面に、接着剤、粘着剤等のハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定する機能を有する物質を塗布し、このように塗布した物質の上にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定した後、圧空成型法等によりポットや、プランター等の形状に成型する方法である。
【０１８０】上記した第一の方法を用いた場合には、射出成型法、圧空成型法、ブロー成型法等に種々の成型方法により、基材となる材料をポットや、プランター等の形状に成型できる。成型物の内表面に、ハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定するための物質は、一般に市販されている接着剤、粘着剤等を特に制限なく使用することができるが、該物質は、栽培する植物に対して実質的に無毒であるか、あるいは低毒性のものを使用することが好ましい。このような接着剤・粘着剤の具体例として、例えば、ゴム系、ラテックス系、アクリル樹脂系、エポキシ樹脂系、ウレタン樹脂系、タンパク質系、デンプン系、セルロース系の接着剤ないし粘着剤を挙げることができる。
【０１８１】これら接着剤・粘着剤は、噴霧、キャスト、ディップ法等により、上記成型物の内表面に塗布し、このように塗布した接着剤・粘着剤の上に、ハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定することができる。また、上記接着剤、粘着剤等に代えて、上記粘着剤等が予め塗布されてなる両面テープを上記成型物の内表面に張り付け、この上にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定してもよい。
【０１８２】上記第一の方法では、射出成型法等により基材となる材料をポットや、プランタ一等の形状に成型した後、熱可塑性エラストマー等にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを分散した材料を二色成型法により該成型物の内面に射出成型することにより、ハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを基材成型物の内面に固定することもできる。
【０１８３】一方、上記第二の方法では、上記接着剤、粘着剤等のハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定できる物質を噴霧、キヤスト法等により基材となる材料のシート又はフィルム表面に塗布し、または、上記両面テープを張り付けて、この上にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを固定した後、圧空成型法等により基材を成型することができる。また、熱可塑性エラストマー等にハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを分散した材料を、基材となる材料と同時に多層押し出し法により多層シート又は多層フィルムに成型し、ハイドロゲル形成性の高分子ないしハイドロゲルを基材シート又は基材フィルム上に固定し、この後、圧空成型法等により基材を成型してもよい。
（植物体育成の容器ないしシートの使用方法）本発明のハイドロゲル形成性の高分子を配置した容器ないしシートを用いて植物体を効果的に移植（植物体の植え込み）するための使用方法としては、例えば、以下のような使用方法が好適に用いられる。
【０１８４】（１）水分吸収時に容器内をハイドロゲルが充分満たす程度の量のハイドロゲル形成性の高分子粒子を配置した容器、ないし容器状に成型したシートを用いて、該容器に植物体の少なくとも一部を入れた後、（肥料）溶液等を添加してハイドロゲル形成性の高分子粒子を膨潤させ植物体を固定させる方法。
【０１８５】（２）水分吸収時に容器内をハイドロゲルが充分満たす程度の量のハイドロゲル形成性の高分子粒子を配置した容器、ないし容器状に成型したシートに溶液等を添加して容器内をハイドロゲルで満たす。次いで、該ゲルに植物体の少なくとも一部を挿入して該植物体を固定させる使用方法。
【０１８６】上記した（１）ないし（２）の方法によれば、水分を含み膨潤したハイドロゲル粒子は適度な流動性を有するため、植物体を傷めることなくスムーズに移植作業が可能となる。また、微細な組織（例えば、種子や組織培養で得られる不定胚、ラン科のＰＬＢ（Protocorm Like Body ：種子発芽時に形成される球形の組織に類似した組織培養で得られる組織体）等）の場合には、ハイドロゲル上に該組織等を単に乗せる方法を用いることも可能である。
【０１８７】（３）水分吸収時に容器内をハイドロゲルが満たさない程度の量のハイドロゲル形成性高分子の粒子を配置した容器ないし容器状に成型したシートを用いて、該容器に植物体の少なくとも一部を植物支持用担体とともに入れた後、溶液等を添加して該ハイドロゲル形成性の高分子を膨潤させ植物体を固定させる方法。
【０１８８】（４）ハイドロゲル形成性高分子の粒子がコーティングされたシート（本発明のシート）で植物体をくるみ、通常の容器や支持体中に植え込んだ後、溶液等を添加して該ハイドロゲル形成性の高分子を膨潤させて植物体を固定させる方法。
【０１８９】上記した（１）ないし（４）のいずれの方法を用いた場合にも、植物体を傷めず、速やかに、支持体への植物体の接着ないし固定が容易である。
（移植方法）一方、本発明のハイドロゲル形成性の高分子を配置してなる本発明の容器ないしシートを用いて植物体を効果的に移植（植物体の取り出し）する方法としては、例えば、以下の使用方法が好適に用いられる。
【０１９０】（１）大過剰の水を容器ないしシートに供給し、ハイドロゲルの流動性を高めて、植物体を傷めずに取り出す方法。
【０１９１】（２）ＬＣＳＴを有するハイドロゲル形成性の高分子を配置した容器ないしシートを用いた場合、植物体に悪影響を及ぼさない程度の温度に該容器ないしシートを暖め、膨潤していたハイドロゲル粒子中の水分を放出させて該ゲル粒子を収縮させ、植物体を傷めずに取り出す方法。
【０１９２】（３）植物体に悪影響を及ぼさない程度の温水を該容器ないしシートに供給し、膨潤していたハイドロゲル粒子中の水分を放出させて該ゲル粒子を収縮させ、且つゲル粒子の流動性を高めることにより、植物体を傷めずに取り出す方法。上記した温水の温度は、植物体の種類等によっても若干異なる場合があるが、約４５℃以下（更には約４０℃以下）であることが好ましい。
【０１９３】上記（１）ないし（３）のいずれの方法を用いた場合にも、植物体を傷めず、速やかに、容器から植物体を取り出すことが容易である。（水分等の液状物質の除去方法）本発明のハイドロゲル形成性の高分子を配置した容器ないしシートを用いて植物体を栽培中に、なんらかの理由（例えば、以下のような理由）により該容器ないしシート内の水分ないし肥料溶液等の液体が不必要になった場合には、例えば、以下の方法により該液体を好適に除去可能である。
【０１９４】移動（出荷など）の際、栽培容器の重さをできるだけ軽くすることが、作業性の向上、輸送費の軽減等の点から重要となる。また、移動の際には植物体が閉鎖的環境下（例えば、植物体が容器ごとセロファンで包装され段ボールに入れられた状態）に置かれる場合が多い。このような環境下においても湿潤状態になって植物体が傷まないように、栽培容器内の水分を出来るだけ少なくしておくことが重要となる。
【０１９５】（１）ハイドロゲル形成性の高分子を配置した本発明の容器ないしシートを用いた場合、乾燥させることによってハイドロゲル粒子の水分を放出させて重さを軽くする方法が使用可能である。ただし、この方法は、結果として生ずる「養分の濃縮」が、植物体に実質的に悪影響を及ぼさない範囲で行う必要がある。
【０１９６】（２）より好ましい方法としては、ＬＣＳＴを有するハイドロゲル形成性の高分子を配置した本発明の容器ないしシートを用い、植物体に悪影響を及ぼさない程度の温度に該容器ないしシートを暖め、該高分子からなるハイドロゲル粒子を収縮させ、膨潤していたハイドロゲル粒子中の水分を放出させて、重さを軽くし、且つ、該容器ないしシート内の水分を減少させる方法が挙げられる。
【０１９７】従来において、出荷前に植物体に供給されていた水は、乾燥耐性を低下させて花持ち等を悪くしたり、果実の糖度を低下させたりする虞があった。このような問題を解決する点からも、上記した（１）ないし（２）の方法（好適には（２）の方法）により、出荷等の前に予め水分等を除去しておくことは望ましいことである。
（ゲル状支持体の使用方法）本発明の植物体育成方法に用いるゲル状支持体は、上記したハイドロゲルないし高分子からなり、一般的に植物体の育成に使用される温度の範囲（例えば、１５～３５℃程度の範囲）内において、ゲル構造に基づく適度な「硬さ」ないし形状保持性を有することが可能である。より具体的には例えば、図１２の模式断面図に示すように、多孔体等の他の育成用担体を併用することなく、適宜容器３１の内部に配置した本発明に用いるゲル状支持体３２を単独ないし単体で使用して、植物体３３を育成すればよい。
【０１９８】上記図１２に示すように、植物体３３の培養段階においては、育成系の通気性を制御する目的で、蓋４１を容器３１の上部に配置することが好ましい。該蓋４１の頂部等には、必要に応じて、図示するような孔４３が設けられていてもよい。このように孔４３を設ける態様においては、更に、必要に応じて該孔４３を覆うように、フィルター部材４２が配置されていてもよい。該フィルター部材４２を配置することは、ホコリ、細菌等のコンタミネーションを防止する点から好ましい。該フィルター部材４２としては、公知のものを特に制限なく使用可能であるが、例えば、濾紙（渡辺泰（株）製の「ろ紙フィルター」（接着剤つき）等）、膜フィルター（ミリポア社製、ミリシール等）等が好適に使用可能である。蓋４１の孔４３は、単数でもよく、また必要に応じて複数開けてもよい。該孔４３の大きさは、通常は数ｍｍ～数ｃｍ程度（更には５ｍｍ～１ｃｍ程度）が好ましい。
【０１９９】上記した容器３１ないし蓋４１の材質、厚さ、大きさ等は特に制限されないが、滅菌時の耐熱性および透明性の点からは厚さが数ｍｍ程度（例えば１ｍｍ程度）のポリカーボネートが好適に使用可能である。
【０２００】培養段階においては、図１２に示したように蓋４１を容器３１の上に配置することが好ましいが、栽培段階（温室、圃場等）においては、蓋４１は配置しない方が、通気性の点から好ましい（後述の図１３参照）。
（多孔体）上記したゲル状の支持体は、それ自体を植物体育成用支持体ないし植込材料として単独で用いてもよく、また、植物体育成の容易性ないし育成コスト等を考慮して、他の多孔体とともに用いてもよい。本発明者の実験によれば、栽培（例えば、圃場栽培）においてハイドロゲル１００％の支持体を使用する場合には、ゲルの種類によっては、地下部の酸素が不足して、根の伸長が阻害される可能性があることが見いだされている。
【０２０１】このような地下部の酸素不足を効果的に防止する点からは、上記したゲル状支持体を、他の多孔体に適宜添加して使用することが好ましい。より具体的には例えば、図１３の模式断面図に示すように、本発明に用いるゲル状支持体３２ａを他の多孔体３５に対して略均一に添加して植物体支持体３４とし、このようにして得た植物体支持体３４を適宜容器３１の内部に配置して、植物体３３を育成すればよい。
【０２０２】図１３は、栽培段階における状態を示す。培養段階においては、通常、図１２に示したように容器３１の上部に蓋４１を配置している（後述の図１４および１５においても同様）。
【０２０３】上記したように本発明に用いるゲル状支持体と併用可能な「他の多孔体」の種類、使用割合等は、孔隙のある多孔体である限り特に制限されない。ゲル状支持体と多孔体との混合比は、該ゲルおよび／又は多孔体の種類等によて適宜調整することも可能であるが、ゲル状支持体の機能発現の効率の点からは、通常、高分子ゲルの「見かけの体積」を基準（１００％）として、混合すべき多孔体の「見かけの体積」が、１％～８０％程度（更には１０～７０％程度、特に３０～５０％程度）が好ましい。
【０２０４】ここに、上記「見かけの体積」とは、平衡吸水状態の高分子ゲルをメスシリンダーに静かに注入した場合の、該ゲル表面に対応するメスシリンダーの「目盛り」の体積をいう。また、混合すべき多孔体の見かけの体積も、同じ方法により測定された体積をいうものとする。
【０２０５】このような多孔体としては、例えば、パーライト、バーミキュライト、軽石、セラミック、ゼオライト、スポンジ、ヘチマ繊維、ロックウール、ヤシガラ、バーク、ピートモス、麦飯石、炭化物、ウール等が、単独で、あるいは必要に応じて２種以上混合して、好適に使用可能である。
【０２０６】また、植物体３３を多孔体等の通常の植物体育成用担体へ移植する際に、図１４の模式断面図に示すように、該植物体３３の根３３ａに本発明に用いるゲル状支持体３２ａを物理的に付着させた後、上記した植物体育成用担体（多孔体等）３５中に埋植し（根３３ａを植物体育成用担体３５中に埋め）て育成（培養後の栽培）してもよい。
【０２０７】更には、図１５の模式断面図に示すように、通常の多孔体３５に植物体３３を埋植した後、本発明に用いるゲル状支持体３２ａを該多孔体３５の表面上に散布して育成（培養後の栽培）を行ってもよい。
【０２０８】上記した図１２～１５の態様においては、培養段階に用いたゲル状支持体３２および容器３１を、そのまま栽培段階にも用いているが、必要に応じて、培養段階に用いる容器と、栽培段階に用いる容器とを異ならせてもよい。
【０２０９】後者の態様を、図１６の模式断面図に示す。図１６を参照して、この態様においては、図１２に示すような培養／栽培双方に使用可能な容器３１および蓋４１に代えて、培養専用の容器４５を用いた以外は、図１２の態様と同様である。図１７～１９（容器４５の孔４３およびフィルター部材４２は、これらの図面からは省いた）の模式断面図それぞれの態様においては、上述した図１３～１５に示すような培養／栽培双方に使用可能な容器３１および蓋４１に代えて、培養専用の容器４５を用いた以外は、図１３～１５の態様と同様である。
【０２１０】図１６～１９の態様（培養段階）に対応する栽培段階の態様を、図２０～２３の模式断面図それぞれに示す。
【０２１１】図２０を参照して、この態様においては、図１６の培養容器４５から取り出された植物体３３および支持体２２が、栽培用植込材料４６（必要に応じて使用される）とともに容器３１内に配置されている。この図２０の態様における栽培用植込材料４６としては、公知の植込材料（上述した多孔体、土壌等）を特に制限なく使用することが可能である。例えば、上記したゲル状支持体３２、（ゲル状支持体３２＋多孔体３５）、または多孔体３５等が使用可能である。植物体３３の種類に応じて、通常の土壌も栽培用植込材料４６として使用可能である。
（植物体）本発明に用いるゲル状支持体が適用可能な植物体は特に制限されず、植物体自体（例えば、苗、種子等）であっても、植物体の一部（例えば、不定胚、カルス、茎等）であってもよい。露地栽培ないし施設（温室等）内栽培時の効率ないし歩留りの点からは、培養室（通常は無菌的条件下）においてある程度生長させた後、そのまま栽培に移行することが好ましい。
（育成条件）本発明に用いるゲル状支持体は、「培養」条件下においても、また「栽培」条件下においても好適に使用可能である。また、該ゲル状支持体は、無菌的／非無菌的条件下、および／又は、無糖／有糖条件下の何れの条件下においても好適に使用可能である。培養から栽培への移行において、培養ないし肥料溶液の組成の差異（例えば、無糖／有糖）に基づき該溶液の交換が望ましい場合には、必要に応じて、後述する実施例に示すように、上記ゲル状支持体を温度変化等により一旦収縮させて、ゲル状支持体からの培養溶液の除去ないし洗浄を行うことが好ましい。
【０２１２】植物体育成の再現性の点からは、本発明における「培養」は、植物体生長条件が実質的に一定（例えば、温度２５℃、照度３０００ルクス、１６ｈｒ日長）に保持された培養室内において行うことが好ましい。
【０２１３】一方、本発明における「栽培」においては、通常、外的環境因子（温度、湿度、日射量、光強度等）の変動によって、植物体の生長条件が変動する。
【０２１４】また、植物の順化等を目的として、「培養」条件を「栽培」条件に近づける（例えば、昼夜の温度差がある温室や、昼間２５℃、夜間１９℃、温度差６℃に設定した培養室等を用いる）場合がある。更に、「栽培」条件を植物に対して好適に制御するために、「培養」条件に近づける（例えば、培養室内における非無菌的状態での容器栽培）場合もある。
【０２１５】本発明の「栽培」においては、非無菌的条件下において植物体を生長させる限り、植物体を収容すべき容器、栽培場所等の他の条件の如何を問わない。より具体的には例えば、栽培用の容器の形状は特に制限されず、ポット等の公知の形状の容器を適宜使用することが可能である。該容器を構成する材料も特に制限されず、紙、プラスチック、陶磁器、ガラス等の公知の材料を適宜使用することが可能である。栽培場所も特に制限されず、露地等の開放系（open-air）の場所；温室、植物工場、培養室を始めとする施設等を適宜使用することが可能である。
【０２１６】本発明に用いるゲル状支持体は、上述したように無菌的条件下および非無菌的条件下で共通して使用することも可能であるため、本発明によれば植物体の培養から栽培までを共通の栽培用支持体ないしゲル状支持体を用いて行うことが可能となる。このように共通の栽培用支持体ないしゲル状支持体を用いる培養から栽培への移植の操作においては、必要に応じて、ハイドロゲルないし高分子内部に保持ないし含有させるべき媒体（水分、および／又は、他の栄養素等の成分）の全部あるいは一部を、（ハイドロゲル形成性高分子自体を植物体に付着させたまま）該ハイドロゲル形成性高分子の上記した温度感応性を利用して交換することが可能であるため、該移植に際しての植物体ないしその一部（例えば、根）の損傷を効果的に防止することが可能である。
（容器）植物体育成中に培養液を供給する場合、図３１の模式断面図に示すように、植物体３３ａ培養用の容器上部（蓋部）４１に培養液供給口５０を設けることが好ましい。同様に、該培養液を除去する場合には、該容器下部３１に培養液排出口５２を設けることが好ましい。植物体に無菌的に培養液を供給する場合、これらの２つ（以上）の口を使用することによって、容易に該培養液の供給／排出の操作を行うことができる。
【０２１７】上記の供給口５０は、蓋４１の頂部に設けることも可能であるが、空気中からのコンタミネーション防止の点、および図３１に示した容器を「重ね置き」したまま培養液の供給が可能な点からは、図３１に示したように蓋４１の側面部に設けることが好ましい。この供給口５０および排出口５２は、必要に応じて複数設けても良い。
【０２１８】これらの供給口５０および排出口５２には、通常はゴム、シリコーンゴム、スポンジ等の軟質ないし多孔質材料からなる栓５１および５３を、それぞれ配置しておくことが好ましい。このような栓を配置した場合には、シリンジ（図示せず）等の培養液供給／排出手段を用いて、栓５１ないし５３を通して培養液を無菌的に供給／排出することが可能となる。
【０２１９】更には、植物体へのＣＯ₂の供給を増加させたり、植物体の乾燥耐性を増大させる点からは、図蓋４１に空気の流通を図るための孔５４を設け、該孔５４にフィルタ部材５５を配置することが好ましい。
【０２２０】植物体の伸長に伴い、育成容器の通気性を増大させることが好ましいが、このような場合、例えば図３２のフィルタ部の部分拡大模式断面図に示すように、フィルタ部材５５上に、該フィルタ部材５５をシールするためのシール部材５６を配置することが好ましい。これにより、時間の経過（植物体の伸張）とともに、徐々にシール５６を剥がすことにより、容器内の空気流通を増大させて植物体の順化を容易に行うことが可能となる。
【０２２１】上記のフィルタ５５は、蓋４１の頂部に設けることも可能であるが、空気中からのコンタミネーション防止の点、および図３１に示した容器を「重ね置き」したまま空気の流通が可能な点からは、図３１に示したように蓋４１の側面部に設けることが好ましい。このフィルタ５５は、必要に応じて複数設けても良い。
（容器内へのゲル配置方法）本発明においては、容器１個に１つの植物体（苗等）を配置して育成させることも可能であるが、スペース、手間ないしコストを低減させる点からは、１個の容器内に複数の植物体を配置することが好ましい。
【０２２２】このように１個の容器内に複数の植物体を配置する場合、該植物体の伸長過程において、それぞれ複数の苗の根同士が絡み合い、特に、根毛の発達する植物種では絡みの度合いが大きくなる可能性がある。このような場合には、圃場栽培へ移行する際に植物体を１本ずつ分ける作業（単苗化）が通常は必須となる。
【０２２３】この、複数の植物体の根同士の絡み合いを防止して、該単苗化作業における根の傷みを回避して単苗化を簡便・容易とする点からは、容器内に配置された複数の植物体相互の間にバリア（仕切り）を配置することが好ましい。このようなバリアないし仕切を配置する方法は、複数の植物体同士の根の「絡まり」を低減させて単苗化を容易とするものである限り、公知の方法を特に制限なく使用することが可能である。根の「絡まり」を出来る限り低減させる点からは、培地面（ゲル状支持体の上端）から、容器底部まで「仕切」が配置されていることが好ましく、より具体的には例えば、容器自体が仕切られているものを用いてもよく、また、容器内を格子状の仕切等を用いて、後から仕切ってもよい。前者の場合、公知の仕切付き容器、例えばプラスチックないし発砲スチロール等からなる、いわゆるプラグ用トレイ、ミックスコンポスト等が好適に使用可能である。
【０２２４】一方、後者の場合、仕切の形状、素材（例えば、プラスチック、紙、布、不織布等からなるフィルムないしシート）等は公知のものを特に制限なく使用可能である。
【０２２５】植物体の培養前の滅菌をオートクレーブ等により高熱で行う場合には、上記した容器および／又は仕切は、所定の耐熱性を有していることが好ましい。
【０２２６】以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明する。
【０２２７】
【実施例】実施例１Ｎ－イソピルアクリルアミド（ＮＩＰＡＡｍ、（株）興人製）１５ｇ、アクリル酸０．４７ｇ、Ｎ，Ｎ’－メチレンビスアクリルアミド（Ｂｉｓ）０．１ｇ、過硫酸アンモニウム０．２ｇ、１Ｎ－ＮａＯＨ６．６ｍｌ、およびＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルエチレンジアミン０．１ｍｌを蒸留水９０ｍｌに溶解し、室温で４時間重合させることにより、架橋構造を有するポリ－Ｎ－イソプロピルアクリルアミド（ＰＮＩＰＡＡｍ）ハイドロゲルを合成した。
【０２２８】該ゲルをミキサーにより機械的に破砕し、不定形状塊（Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ）を作製した。該Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈを蒸留水１リットル中に分散させ、一旦４℃に冷却した後、５０℃に加温することによりＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈを収縮させ、上清を捨てた。この水洗操作を２回繰り返して、未反応モノマー及び残存開始剤を除去した。更に該Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈを真空乾燥（１００℃、２４時間）によって乾燥して、粉末状Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ（ハイドロゲル形成性高分子）を得た。
【０２２９】上記により得られたＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末の１９℃及び２６℃における市販の粉末園芸用肥料（商品名：ハイポネックス２０－２０－２０、ハイポネックスジャパン（株）製、１ｇ／Ｌ）に対する平衡吸水率を、前述した方法によってそれぞれ測定したところ、１９℃で約７２００％であり、２６℃で約５２００％であった。ここで使用した１９℃および２６℃の温度は、後述する実施例において、植物体栽培を行った温室内の最低及び最高温度に対応する温度である（後述する図２４のグラフ参照）。
実施例２（ハイドロゲル形成性高分子の植物栽培用支持体としての使用）三角フラスコ（柴田ハリオ硝子（株）製、容量５００ｍｌ）中に、市販の粉末状園芸用肥料（商品名：ハイポネックス７－６－１９、ハイポネックスジャパン（株）製、３．５ｇ／Ｌ、シュークロース２０ｇ／Ｌ、バナナ１００ｇ／Ｌ、寒天６ｇ／Ｌを含有）２００ｍｌを分注し、オートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２Ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）した後、室温にて放置し固化させた。
【０２３０】上記滅菌後の培地に、約２ｃｍに伸長した蘭の苗たるＹＴ５７（Cym. LOVELYANGEL 'The Two Vergins' ）をフラスコ当たり２５本の割合で移植し、培養室（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６時間の日長）内で、無菌的に４カ月間培養した。得られたＹＴ５７の苗を培地ごとフラスコから取り出し、流水下で苗の根に付着している培養液を含む寒天を除去した後、新鮮重が２．４ｇの苗を１０本選定した。
【０２３１】次いで実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末、８ｇを、５００ｍｌの粉末状園芸用肥料溶液（商品名：ハイポネックス２０－２０－２０、ハイポネックスジャパン（株）製、１ｇ／Ｌ）に混合分散させ、室温にて放置し、上記Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末に該ハイポネックス溶液を完全に吸収させ、ハイドロゲルを作製した。
【０２３２】このようにして得たハイドロゲルを直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）内に配置し、１つのポットに、前記した１０本のＹＴ５７の苗を該ハイドロゲルに挿入し（植替え）、温室（温度：１８～３０℃）内で通常の栽培を行った。この温室内栽培において、灌水は３～４日毎に、鉢全体の重さが初期値と同じになるように行った。上記温室内栽培における実験期間内の平均的１日の経時温度変化は、図２４のグラフに示す通りであった。
【０２３３】上記した温室内栽培開始から５０日後に、苗１本当たりの新鮮重を計測したところ、平均４．１ｇ／１本であった（下記（表１）参照）。得られた苗において、外観上、根は良く伸長しており、基部から新しい根が動き出しているものが多数見受けられた。茎葉部は葉色が濃く、葉数の増加も平均２枚以上であって、地上部の生長も非常に良好であった。
実施例３プラントボックス（柴田ハリオ（株）、ポリカーボネイト製、上部の大きさ：７５×７５ｍｍ、下部の大きさ：６５×６５ｍｍ、高さ１００ｍｍ）中に、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末、１．７ｇを、実施例２で使用したハイポネックス培地１０５ｍｌに混合分散させた。得られた分散液を、ペーパーポット（日本甜菜製糖株式会社製）で９区分に仕切り、オートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）した後、室温にて放置したところ、該高分子Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末は上記ハイポネックス培地を完全に吸収してゲル化した。
【０２３４】このようにしてプラントボックス内、ペーパーポットで９区分で配置したゲル中に、葉長約２ｃｍに伸長したＹＴ５７の苗９本をそれぞれ移植し、培養室（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６ｈ日長）内で無菌的に培養した。
【０２３５】上記培養開始３カ月後、ＹＴ５７の苗が約１０ｃｍに伸長した時点で、非無菌的条件下で、上記プラントボックスを３５℃の温水中に２０分間浸漬したところ、上記高分子Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈは収縮して完全に凝集し、ハイポネックス培養液の殆ど全てが、完全に凝集した担体から放出された。
【０２３６】上記プラントボックスに予め開けておいた直径５ｍｍの穴の栓（シリコーン製）を外して、上記で放出された培地をプラントボックス外に流出させて除去した後、上記栓を再びプラントボックスの穴に装着した。
【０２３７】該プラントボックス内に、１６℃の水道水約１００ｍｌを加えて上記の（完全に凝集した）Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈに吸収させた後、該プラントボックスを４０℃の温水中に浸漬することにより、水の温度を再度約３５℃に温度を上昇させて、Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈを収縮させて完全凝集体とし、水道水を該ビーズ状担体から放出させた。このようにして、上記培養で用いたハイポネックス培地を、完全にＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈの凝集した担体から除去した。
【０２３８】Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈの凝集した担体と、ペーパーポットとを、根に付着させたまま、上記により得られた培養後のＹＴ５７を、実施例２で用いたゲルを支持体として用いて、直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替えた。このようにして植え替えたＹＴ５７を用いて、温室内で通常の栽培を行った。この温室内栽培において、灌水は３～４日毎に、それぞれのポット（鉢）全体の重さが初期値と同じになるようにして行った。この温室内栽培の実験期間内の平均的１日の経時温度変化は、上記図２４のグラフに示す通りであった。
【０２３９】温室内栽培開始から５０日後にＹＴ５７の苗の外観を観察したところ、根は良く伸長しており、基部から新しい根が動き出しているものも多数見受けられた。また、ＹＴ５７の茎葉部は葉色が濃くなっており、葉数の増加も苗一本当たり平均２枚以上であり、更に、地上部の生長も非常に良好であった。
比較例１実施例２と同様に、新鮮重２．４ｇのＹＴ５７の苗を１０本選定し、ラン苗の支持体として最も多く使用されている市販の水苔（ニュージーランド産）を用いて、直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替え、温室（１日内の温度変化は図２４のグラフに示す通り。以下の温室栽培において同様）内で通常の栽培を行った。
【０２４０】栽培開始から５０日後、上記ＹＴ５７の新鮮重は平均３．４ｇ／１本（下記表１参照）で、実施例２で本発明のハイドロゲルないし高分子からなる栽培用支持体を用いた場合と比較して、苗の生長が緩慢であった。上記栽培後の苗においては、外観上、根は伸長していたが、茎葉部は葉色が薄く葉数の増加も苗１本当たり１枚のみで、しかも苗の地上部の生長は緩慢であった。
比較例２実施例２と同様に、新鮮重２．４ｇのＹＴ５７の苗を１０本選定し、市販の土壌グローウェルＭＯ－２（有限会社向山蘭園、ニュージーランド産バーク）を支持体として、直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替え、温室内で通常の栽培を行った。
【０２４１】栽培開始から５０日後、苗の新鮮重は平均３．２ｇ／１本（表１参照）であった。栽培後の苗においては外観上、根は伸長していたが、傷んでいる根も多数見受けられた。茎葉部は葉色が薄く、葉数の増加も苗１本当たり１枚のみで、苗自体の生長も緩慢であった。
【０２４２】上記実施例２および比較例１、２で得られたＹＴ５７の生長結果を、下記表１にまとめて示す。
＜表１＞＜各種支持体がＹＴ５７の生長に及ぼす影響＞＜支持体名＞＜新鮮重（ｇ／１本）＞Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ４．１水苔３．４バーク３．２上記（表１）において、植替え前の苗の重さは全て２．４ｇとし、「新鮮重」の数値は、全て苗１０本の平均値として求めた（ＹＴ５７＝ Cym． LOVELY ANGEL 'The Two Vergins' ）。
比較例３実施例２と同様に、新鮮重２．４ｇのＹＴ５７の苗を１０本選定した。次いで市販の吸水性ポリマー、乾燥アクアリックＣＡ－Ｈ（（株）日本触媒製、ポリアクリル酸架橋体、不定形塊状、大きさ１～３ｍｍ）８ｇを、５００ｍｌの粉末状園芸用肥料溶液（商品名：ハイポネックス２０－２０－２０、ハイポネックスジャパン（株）製、１ｇ／Ｌ）中に混合分散させた後、室温にて放置して、該アクアリックＣＡ－Ｈ担体に該ハイポネックス溶液を完全に吸収させ、ゲルを作製した。
【０２４３】このようにして得られたゲルを支持体として用いて、上記ＹＴ５７の苗を直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替え、温室内で通常の栽培を行った。
【０２４４】ただし灌水は３～４日毎に、鉢全体の重さが初期値と同じになるように行った。栽培開始から５０日後に苗の状態を調査したところ、外観上、根は殆ど伸長しておらず、しかも根端が壊死していた。茎葉部も葉色が薄く、葉数の増加もなく、苗自体も殆ど伸長していなかった。
実施例４（ハイドロゲル形成性高分子の土壌改質剤としての使用）実施例２と同様の条件で無菌的培養をした蘭の苗、ＭＢＤＢ（Cym ． MUSIC BOX DANCER 'Ballerina')を、該培養で用いた三角フラスコから取り出し、流水下で根に付着している培養液を含む寒天を除去した後、新鮮重が２．０ｇの苗を１０本選定した。
【０２４５】比較例２で用いた市販の土壌たる「グローウェルＭＯ－２」に対して、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末を、それぞれ０．５ｗｔ. ％、１．０ｗｔ. ％、１．５ｗｔ. ％および２．０ｗｔ. ％の割合で混合したものを支持体として用いて、上記で選定した１０本の苗を、直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替えた。市販の液体状園芸用肥料、ハイポネックス２０－２０－２０溶液（０．５ｇ／Ｌ）を、充分に上記の土壌に灌注（irrigation）した後、温室内で通常の栽培を行った。
【０２４６】実験期間内の平均的１日の経時温度変化は、図２４のグラフに示す通りであった。栽培開始から３０日後に根の状態を調査したところ、植傷み（植替えに起因する根の傷み）が少なく、太い根が良く伸長しており、基部から新しい根が動き出しているものも多数見受けられた。また、本発明のハイドロゲルないし高分子からなる土壌改質剤の添加量が多い程、根の生長点近傍組織の生存率が若干上昇する傾向が観察された（下記の表２参照）。
比較例４実施例４と同様、新鮮重が２．０ｇのＭＢＤＢの苗を１０本選定し、該グローウェルＭＯ－２を支持体として直径１２ｃｍの黒ビニールポットに植替え、０．５ｇ／Ｌのハイポネックス２０－２０－２０溶液を充分に土壌灌注した後、ハウス内で通常の栽培を行った。栽培開始から３０日後苗の状態を調査したところ、根の生長点近傍組織が壊死しているものが多かった（表２参照）。
＜表２＞＜土壌改質剤Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈの添加濃度がＭＢＤＢの根に及ぼす影響＞（ハイポネックス２０- ２０- ２０溶液を包含させた場合）

上記表２において、「根端生存率」とは、１０本のＭＢＤＢ苗の全根数に対して、根端部が生存している根の合計数の割合を示す。根端部が「生存している」か否かは、全ての根の先端部が「褐変」しているか否かを目視で観察することにより、判断した（ＭＢＤＢ＝ Cym． MUSIC BOX DANCER 'Ballerina' ）。
比較例５実施例４と同様に、新鮮重が２．０ｇのＭＢＤＢの苗を１０本選定した。別に、比較例２で用いた市販の土壌、グローウェルＭＯ－２に、市販の吸水性ポリマー、乾燥スミカゲルＳ－５０（住友化学工業（株）製、ポリ（アクリル酸－ビニルアルコール）共重合体、球形、直径１８０～２９０μｍ）を２ｗｔ. ％混合したものを支持体として用いて、上記した１０本のＭＢＤＢの苗を、直径１２ｃｍの黒ビニールポット（兼弥商店製）に植替えた。
【０２４７】このようにして植替えたポットに、市販の粉末状園芸用肥料、ハイポネックス２０－２０－２０溶液（０．５ｇ／Ｌ）を充分に土壌灌注した後、温室内で通常の栽培を行った。
【０２４８】温室内栽培開始から３０日後に上記苗の根の状態を調査したところ、外観上、実施例４と同様に植傷みは少なかった。しかしながら、実施例４で得られた栽培後の苗に比較して、殆どの根は非常に細いものであった。
実施例５植物体用矮化剤として一般的に使用されている市販の矮化剤、スミセブン原液（ウニコナゾール濃度２５０ｐｐｍ、株式会社アグロス製）を１０倍に希釈した溶液１０００ｍｌを、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末５０ｇに吸収させ、常温にて乾燥した後破砕して、ウニコナゾールを包含したＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末を作製した。
【０２４９】次いで、温室内で１年間栽培しリード（reed）長が２３ｃｍに伸長した蘭の苗、ＹＮ７４（Cym ． SYLVAN STAR 'Venus'）の黒ビニールポット（直径１２ｃｍ、支持体はグローウェルＭＯ－２）へ、上記Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末（ウニコナゾールを包含）０．５ｇを支持体へ表面散布することにより添加し、５分間噴霧灌水をした後、温室内で通常の栽培を行った。
【０２５０】栽培実験開始から５０日後に上記蘭のリード長さを測定したところ、２９．０ｃｍであり、リード長さの当初の値（２３ｃｍ）を基準として６．０ｃｍの伸長にとどまった。すなわち、上記Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ粉末に包含させたウニコナゾールが矮化効果を発揮したことが確認された（下記表３参照）。
比較例６実施例５と同様な栽培方法によりリード長が１６．５ｃｍに伸長したＹＮ７４（黒ビニールポット内）を矮化剤無添加区として、引き続き通常の栽培を行った。
【０２５１】実験開始から５０日後に、リードの長さを測定したところ３０．５ｃｍであった。すなわち、リード長さの当初の値（１６．５ｃｍ）を基準として、該リードは１４．０ｃｍ伸長していた（下記表３参照）。
比較例７実施例５で用いたスミセブン原液を１００倍に希釈した溶液１００ｍｌを、実施例５と同様な栽培によりリード長が２１ｃｍに伸長したＹＮ７４（黒ビニールポット内）の株へ土壌灌注した後、通常の栽培を行った。
【０２５２】実験開始から５０日後にリードの長さを測定したところ、２７．０ｃｍであった。すなわち、リード長さの当初の値（２１ｃｍ）を基準として、６．０ｃｍの伸長にとどまり、上記矮化剤の矮化効果が確認された（下記表３参照）。
＜表３＞＜矮化剤を包含したＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈがリード生長に及ぼす影響＞＜矮化剤添加方法＞＜矮化剤処理前(Ａ) ＞＜矮化剤処理後(Ｂ) ＞＜(Ｂ－Ａ)＞（添加量）リード長( ｃｍ) リード長( ｃｍ) （ｃｍ）
Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ-Ｈ２３．０２９．０６．０（０．５ｇ）
土壌灌注２１．０２７．０６．０無添加１６．５３０．５１４．０上記表３において、「Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ０．５ｇ」は、ウニコナゾール０．２５ｍｇを含有していた。「土壌灌注」は、１００倍に希釈した液１００ｍＬ（ウニコナゾール０．２５ｍｇ含有）を用いた（ＹＮ７４＝ Cym． SYLVAN STAR 'Venus'）。
実施例６ポリエチレン製ポット（直径φ９ｃｍ×高さ７ｃｍ）の内面（底面および側面）のほぼ全面に、両面紙粘着テープ（（株）寺岡製作所製、商品名：両面テープ）を張り付けた後、実施例１で作製した乾燥ＰＮＩＰＡＡｍ粒子を該ポットの中に注入し、手動でよく浸盪して該粒子を上記の両面紙粘着テープ上にほぼ均一に付着させた。上記ポットを逆さまにして未接着のＰＮＩＰＡＡｍの粒子を除去して、ポット基材１１ｃの内面に、両面粘着テープ１８を介して、ＰＮＩＰＡＡｍ粒子１２ｂがコーティングされたポット（図２５）を作製した。上記ポリエチレン製ポットの内表面の面積（計算値）は２６１ｃｍ² 、該ポット内面に付着したＰＮＩＰＡＡｍ粒子の重量は３．０ｇであり、したがってＰＮＩＰＡＡｍ粒子の塗布量は０．０１１５ｇ／ｃｍ² （１１．５ｍｇ／ｃｍ² ）であった。
実施例７厚さ０．５ｍｍのポリエチレンシート（タキロン社製）上に、ゴム系粘着剤（商品名：スリーボンドＮｏ．１５００、スリーボンド社製）を約０．１ｍｍの厚みになるようにコーター（安田精機社製）でコーティングし、該粘着剤のコーティング層の上に、実施例１で作製した乾燥ＰＮＩＰＡＡｍ粒子を厚さが約０．１ｍｍになるようにコーターでコーティングした。ＰＮＩＰＡＡｍ粒子の塗布量は０．００５ｇ／ｃｍ² （５ｍｇ／ｃｍ² ）であった。
【０２５３】このようにして得た３層構造を有するシート（乾燥ＰＮＩＰＡＡｍ粒子／粘着剤／ポリエチレン）を成型材料として用いて、圧空成型機（住友重機社製）により内面にＰＮＩＰＡＡｍの粒子がコーティングされたポット（直径φ９ｃｍ×７ｃｍ、図２５）を作製した。
実施例８厚さ０．１５ｍｍの濾紙（商品名：フィルターペーパー、ワットマン・インターナショナル社製）上に、デンプン系粘着剤（商品名：ヤマト糊、ヤマト株式会社製）を約０．１ｍｍの厚みになるようにコーターでコーティングし、その上に、実施例１で作製した乾燥ＰＮＩＰＡＡｍの粒子を厚さが約０．１ｍｍになるようにコーターでコーティングした。ＰＮＩＰＡＡｍ粒子の塗布量は０．００５ｇ／ｃｍ² （５ｍｇ／ｃｍ² ）であった。
【０２５４】次に、上記の３層構造を有するシート（乾燥ＰＮＩＰＡＡｍ粒子／粘着剤／濾紙）を成型材料として用いて、１つのマスの大きさが縦２ｃｍ×横２×高さ４ｃｍで、３×３＝９個のマスを有する格子状シート（図２６参照）を作製した。図２７は、ここで得られた１つのマスを上方から見た場合の模式平面図である。
実施例９三角フラスコ（柴田ハリオ硝子（株）製、容量５００ｍｌ）中に、ハイポネックス培地（商品名：ハイポネックス７－６－１９、ハイポネックスジャパン（株）製、３．５ｇ／Ｌ、シュークロース２０ｇ／Ｌ、バナナ１００ｇ／Ｌ、寒天６ｇ／Ｌを含有）を２００ｍｌ分注し、オートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２Ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）した後、室温にて放置して固化させた。
【０２５５】上記滅菌後のハイポネックス培地に、約２ｃｍに伸長した蘭の幼苗たるＳＪＩＣ（Cym. SARAH JEAN "Ice cascade" ）を、上記三角フラスコ１本当たり２５本の割合で移植し、培養室（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６時間の日長）内で、無菌的に４カ月間培養した。得られたＳＪＩＣの苗を培地ごとフラスコから取り出し、流水下で苗の根に付着している培養液を含む寒天を除去した後、新鮮重が２．８～３．２ｇ（平均３．０ｇ）の苗を多数選定した。
【０２５６】この苗を９本、市販のグローウェルＭＯ２（有限会社向山蘭園、ニュージーランド産バーク）とバポ（有限会社向山蘭園、北欧産ピートモス）を８：２（体積比）で混合したもの２５０ｍｌを支持体として、実施例６で作製したポット型の容器に植替えた。
【０２５７】この植替えに際しては、該支持体を約５ｍｍの厚さでポット底部に敷いた後、ポット内の空間に上記ＳＪＩＣの苗を片手で保持しつつ、他方の手で上記混合支持体をポット内に注入して、該支持体の上部がポットの下端から約４ｃｍの位置まで来るようにポット内を満たした。このようにしてポット内を満たした後の支持体を（手で）押しつける操作は、植物体を固定させる効果がある一方で、根を傷める虞があるため行わなかった。
【０２５８】このようにしてＳＪＩＣの苗および支持体で満たした上記ポット内に、１７５ｍｌの粉末園芸用肥料の溶液（商品名：ハイポネックス２０－２０－２０、ハイポネックスジャパン（株）製、１ｇ／Ｌ）を添加したところ、図２８（図２８には１本の苗のみ示す）の模式断面図に示すように、容器壁面のＰＮＩＰＡＡｍの粒子１２ｂが該溶液を吸収しながら容器中心部に向かって膨潤し、内側の支持体（グローウェルＭＯ２／バポの混合物）６４を圧迫することによって、根を傷めることなく該植物体６５の適度な固定、および支持体６４への接着が間接的に行われた。
【０２５９】このようにしてポット内に植替えた苗を、温室内（平均最低温度１９℃、平均最高温度２６℃）に配置して、通常の栽培を行った。栽培途中の潅水は２～３日毎に、容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２６０】栽培開始から３６日後に、容器から苗を取り出し新鮮重を計測したところ平均４．５ｇ／１本であった。
【０２６１】上記した育成後の苗において、外観上、根の生育は順調で、特に容器壁面に達した根は非常に良好に生長しており、基部から更に生長している根も多数観察された。また、容器壁面に到達した根の横断面（根端から約２ｃｍ基部側）を顕微鏡下で観察したところＰＮＩＰＡＡｍの粒子間に無数の根毛が生長していた。更に、茎葉部も葉色が濃く苗全体の生長は順調であった。
【０２６２】上記温室内栽培における実験期間内の平均的１日の経時温度変化は、図２４のグラフに示す通りであった。
比較例８実施例９で用いたＰＮＩＰＡＡｍ粒子コーティングポットに代えて、実施例６で用いた市販のポットをそのまま（ＰＮＩＰＡＡｍの粒子はコーティングせずに）用いた以外は、実施例９と同様にして、平均新鮮重３．０ｇのＳＪＩＣの苗を９本選定し、グローウェルＭＯ２とバポとを８：２（体積比）で混合したもの４００ｍｌを支持体として上記ポットに植替えた。この際、ポットに満たした支持体のみでは植物体の固定化が困難であったため、該支持体を手で軽く下方に押しつけることによって植物体を固定させた。このようにして植物体を固定化したポット内に、実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液を１７５ｍｌ添加した。
【０２６３】このようにして固定化したポットを用いた以外は実施例９と同様にして、温室内（平均最低温度１９℃、平均最高温度２６℃）で通常の栽培を行った。栽培途中の潅水も、実施例９と同様、２～３日毎に、容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２６４】栽培開始から３６日後に、容器から苗を取り出し新鮮重を計測したところ平均３．５ｇ／１本であった。外観上、茎葉部は下葉が枯れ、また、根の先端部や側面が褐変枯死しているものが観察された（本発明者の知見によれば、この原因の一つとして、容器内の過剰な水分が根への悪影響を与えたものと推定される）。また、容器壁面に到達した根の横断面（根端から約２ｃｍ基部側）を顕微鏡下で観察したところ、根毛は殆ど観察されなかった。
比較例９実施例９で用いたＰＮＩＰＡＡｍ粒子コーティングポットに代えて、直径９ｃｍの市販の黒ビニールポット（兼弥商店製、容器下部に直径１ｃｍの穴が開いている）を用いた以外は、実施例９と同様にして、平均新鮮重３．０ｇのＳＪＩＣの苗を９本選定し、グローウェルＭＯ２とバポを８：２（体積比）で混合したもの４００ｍｌを支持体として、該ポットに植替えた。この際、比較例８と同様にして、ポットに満たした支持体を下方に押しつけることによって植物体を固定させた。更に、該支持体上に、実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液を、該溶液がポット下部の穴から出てくるまで充分潅水した。
【０２６５】このようにして固定化したポットを用いた以外は実施例９と同様にして、温室内（平均最低温度１９℃、平均最高温度２６℃）で通常の栽培を行った。潅水は、栽培途中２～３日毎に、水がポット下部の穴から出てくるまで（容器内支持体の平衡吸水率に達するまで）行った。
【０２６６】栽培開始から３６日後に、ポットから苗を取り出して新鮮重を計測したところ、平均３．９ｇ／１本であった。このようにして得られた苗は、外観上、実施例９においてＰＮＩＰＡＡｍの粒子をコーティングした容器で育成した苗よりも明らかに生育が劣っていた。容器壁面に到達した根や支持体中に伸長した根の横断面を顕微鏡下で観察したところ根毛は殆ど観察されなかった。
比較例１０実施例６で用いたＰＮＩＰＡＡｍ粒子に代えて、市販の吸水性ポリマーたる乾燥アクアリックＣＡ－Ｈ（（株）日本触媒製、ポリアクリル酸架橋体、不定形塊状、大きさ１ｍｍ）を用いた以外は、実施例６と同様の方法でポットを作成した。
【０２６７】このようにして得られたポットを用いた以外には実施例９と同様にして、平均新鮮重３．０ｇのＳＪＩＣの苗を９本選定し、グローウェルＭＯ２とバポを８：２（体積比）で混合したもの２５０ｍｌを支持体として該ポットに植替え、更に、実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液を１７５ｍｌ添加した。
【０２６８】上記により固定化したポットを用いて、温室内（平均最低温度１９℃、平均最高温度２６℃）で通常の栽培を行った。栽培途中の潅水は２～３日毎に、容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２６９】栽培開始から３６日後でも、外観上、茎葉部、地下部共に殆ど伸長しておらず、根の先端が褐変枯死していた。また、根を顕微鏡下で観察したところ、根毛は殆ど観察されなかった。
実施例１０通常の温室栽培で育成した、葉長１６ｃｍのＳＦＢＢ（Cym. SUNSHINE FALLES"Butterball" ）の苗を１本、市販のグローウェルＭＯ２（４００ｍｌ）を支持体として、実施例７で作製したポット状の容器に植替えた（この際、支持体を押しつける操作は、植物体を固定させる効果があるものの、根を傷める虞があるので行わなかった）。更に、該ポット内に実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液を１７５ｍｌ添加したところ、容器壁面のＰＮＩＰＡＡｍの粒子が該溶液を吸収しながら容容器中心部に向かって膨潤し、内側の支持体（グローウェルＭＯ２／バポの混合物）を圧迫することによって、根を傷めることなく該植物体への適度な固定および支持体の接着が間接的に行われた。
【０２７０】このようにして固定化したポットを用いて、温室内（平均最低温度１９℃、平均最高温度２８℃）で通常の栽培を行った。栽培途中の潅水は２～３日毎に、容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２７１】栽培開始から１００日後に、容器から苗を取り出し新鮮重を計測したところ、平均１８．２ｇ／１本であった。この育成後の苗の取り出しは、苗を育成させたポットごと温水（３８℃）に浸漬して、容器壁面のＰＮＩＰＡＡｍの粒子２ｂを収縮させることにより、容易に行うことができた。
【０２７２】上記した育成後の苗においては、外観上、根の生育は順調で、容器壁面に達した根は特に旺盛に生長していた。また、容器壁面を伸長中の根の横断面（根から約２ｃｍ基部側）を顕微鏡下で観察したところ、ＰＮＩＰＡＡｍの粒子間に、根毛がびっしり繁茂していた（図２９の顕微鏡写真、倍率：×１００倍を参照）。茎葉部も葉色が濃く苗全体の生長は順調であった。
比較例１１実施例１０で用いたＰＮＩＰＡＡｍ粒子コーティングポットに代えて、市販の黒ビニールポット（兼弥商店製、直径φ９ｃｍ×７ｃｍ）を用いた以外は実施例１０と同様にして、通常の温室栽培で育成した葉長１６ｃｍのＳＦＢＢの苗を１本、市販のグローウェルＭＯ２（４００ｍｌ）を支持体として、該黒ビニールポットに植替えた（この際、支持体を手で軽く下方に押しつけることによって、植物体を固定させた）。更に、支持体上に実施例１０で用いた粉末園芸用肥料の溶液を、溶液がポット下部の穴から出てくるまで充分潅水した。
【０２７３】このようにして固定化したポットを用いて、温室内で通常の栽培を行った。潅水は、栽培途中２～３日毎に、水がポット下部の穴からでてくるまで（容器内支持体の平衡吸水率に達するまで）行った。
【０２７４】栽培開始から１００日後、容器から苗を取り出し新鮮重を計測したところ平均１２．６ｇ／１本であった。外観上、根の生育は順調であったが容器壁面に達した根の生長は実施例１０の苗に比べて明らかに劣り、根毛も殆ど伸長していなかった（図３０の顕微鏡写真、倍率：×１００倍を参照）。茎葉部も葉色が薄く苗全体の生長は劣っていた。
実施例１１プラントボックス（柴田ハリオ（株）、ポリカーボネイト製、上部の大きさ：７５×７５ｍｍ、下部の大きさ：６５×６５ｍｍ、高さ１００ｍｍ）中に、実施例８で作製した格子状シートを配置した後、オートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）した。
【０２７５】次に、無菌的に培養し葉長約４ｃｍ、根長約５ｃｍに伸長した蘭の苗たるＳＪＫＨ（Cym. SARAH JEAN "Koihime" ）の９本の苗を、それぞれ１本づつ上記格子状シートの９個のマス中に配置した。
【０２７６】一方、実施例９で使用したハイポネックス培地（１０５ｍｌ）をオートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）し、上記容器中の格子状シートの９個のマス中に注入したところ、該シートに付着したＰＮＩＰＡＡｍの粒子が該培地を吸収し、膨張して上記植物体（蘭の苗）は完全に固定された。
【０２７７】このようにして固定化した蘭の苗を、培養室（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６ｈ日長）内で無菌的に２カ月培養した。約２カ月後に葉長約１０ｃｍに伸長した時点で、非無菌的条件下で、上記プラントボックスを３５℃の温水中に２０分間浸漬したところ、上記ＰＮＩＰＡＡｍの粒子は収縮して完全に凝集し、ハイポネックス溶液の殆ど全てが、完全に凝集した担体（ＰＮＩＰＡＡｍ粒子）から放出された。
【０２７８】上記プラントボックスに予め開けておいた直径５ｍｍの穴の栓（シリコーン製）を外して、上記で放出された培地をプラントボックス外に流出させて除去した後、上記栓を再びプラントボックスの穴に装着した。
【０２７９】該プラントボックス内に、１６℃の水道水約１００ｍｌを加えて上記の（完全に凝集した）ＰＮＩＰＡＡｍの粒子に吸収させた後、該プラントボックスを４０℃の温水中に浸漬することにより、水の温度を再度約３５℃に上昇させて、該ＰＮＩＰＡＡｍの粒子を収縮させて完全凝集体とし、水道水を該ビーズ状担体から放出させた。このようにして、上記培養で用いたハイポネックス培地を、完全にＰＮＩＰＡＡｍの粒子の凝集した担体から除去した。
【０２８０】ＰＮＩＰＡＡｍの粒子の凝集した担体を含む格子状シートを根に付着させたまま、上記により得られた培養後のＳＪＫＨを１本ずつ、グローウェルＭＯ２を支持体として用いた以外は実施例９と同様にしてＰＮＩＰＡＡｍ粒子コーティングしたポット（実施例６で作製した容器）に植替え、更に実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液２００ｍｌを添加した。この際、格子状シート及び植物体に付着したＰＮＩＰＡＡｍの粒子が該肥料溶液を吸収することによって、また、容器壁面のＰＮＩＰＡＡｍの粒子が該溶液を吸収しながら容器中心部に向かって膨潤し、内側の支持体（グローウェルＭＯ２）を圧迫することによって、根を傷めることなく該植物体への適度な固定および支持体の接着が間接的に行われた。
【０２８１】このようにして植え替えたＳＪＫＨを用いて、温室内で通常の栽培を行った。この温室内栽培において、灌水は３～４日毎に、それぞれのポット（鉢）全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２８２】温室内栽培開始から５０日後にＳＪＫＨの苗の外観を観察したところ、根は良く伸長しており、基部から新しい根が動き出しているものも多数見受けられた。また、容器壁面に到達した根の横断面（根端から約２ｃｍ基部側）を顕微鏡下で観察したところ、ＰＮＩＰＡＡｍの粒子間に無数の根毛が生長していた。さらに、茎葉部も葉色が濃く、植物体の生長は非常に良好であった。
比較例１２プラントボックス（柴田ハリオ（株）、ポリカーボネイト製、上部の大きさ：７５×７５ｍｍ、下部の大きさ：６５×６５ｍｍ、高さ１００ｍｍ）中に、実施例７で用いたハイポネックス培地（寒天７ｇ／Ｌ添加）を１０５ｍｌを入れてオートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２ｋｇ／ｃｍ² 、２０分）した。
【０２８３】実施例１１と同様にして、無菌的に培養し葉長約４ｃｍ、根長約５ｃｍに伸長したＳＪＫＨの９本の苗をピンセットを用いて植え込んだ。この際、苗の移植に多少の時間を要し、また、根が折れるなどの物理的損傷を回避できなかった。
【０２８４】培養室（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６ｈ日長）内で無菌的に２カ月培養し、葉長約１０ｃｍに伸長した時点で、容器から苗を取り出し、流水下で苗に付着している培地を除去した。この際、手作業による寒天培地の除去に多大な時間を要し、根も痛めてしまった。
【０２８５】上記の育成方法により得られたＳＪＫＨの苗を１本ずつグローウェルＭＯ２を支持体として用いて、黒ビニールポット（直径φ９ｃｍ×７ｃｍ）に植替えた（この際、支持体を押しつけることによって植物体を固定させた）。更に、該容器内に実施例９で用いた粉末園芸用肥料の溶液を、溶液がポット下部の穴からでてくるまで充分潅水した。
【０２８６】上記により黒ビニールポットに植替えた苗を用いた以外は実施例１１と同様にして、温室内で通常の栽培を行った。ただし、栽培途中の潅水は３～４日毎に、水がポット下部の穴からでてくるまで（容器内支持体の平行吸収率に達するまで）行った。
【０２８７】温室内栽培開始から５０日後に苗の外観を観察したところ、植替え時に痛めた根が褐変枯死していた。また、伸長中の根の横断面（根端から約２ｃｍ基部側）を顕微鏡下で観察したところ根毛は殆ど伸長していなかった。茎葉部も葉色が薄く苗全体の生長は緩慢であった。
実施例１２（水分蒸発率の測定）下記のそれぞれの植物体育成系を構成する固体成分（培養用容器および乾燥高分子、重量：Ｗ₁（ｇ））を、を精密な秤（（株）島津製作所製の電子天秤、商品名：LIBROR EB-3200-D）で測定した。次いで、該固体成分に液体成分（培養溶液）を加えて、全体の重量（Ｗ₂）を同様に精密な秤で測定した。該液体成分の精密な重量は、（Ｘ＝Ｗ₂－Ｗ₁）として計算した。
【０２８８】植物体を上記育成系に移植した後、該植物体をも含めた育成系全体の重量Ｙを、上記と同様に精密に測定した。
【０２８９】上記重量Ｙを秤量した後、通気性を評価すべき植物体育成系全体を２５℃、湿度３０％の環境下で放置した後の植物体育成系全体の重量Ｚ（１日（２４時間）後のＺｄ、１週間後の重量Ｚｗ、および１ケ月（３０日）後の重量Ｚｍ）を、それぞれ測定し、下記の計算式に基づいて水分蒸発率を求めた。
【０２９０】水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｄ）／Ｘ、水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｗ）／（Ｘ×７）、又は、水分蒸発率（％／２４hour）＝１００×（Ｙ－Ｚｍ）／（Ｘ×３０）
＜条件－１＞従来の有糖寒天培養（有糖寒天培養条件）
容器の大きさ、材質：直径９ｃｍ、高さ１８ｃｍ、容積９５０ｍｌ；ガラス蓋の大きさ、材質：直径７ｃｍ、ＴＰＸ樹脂寒天の重量：０．１２ｇフィルターの材質：ろ紙フィルターの合計面積：０．５ｃｍ²糖の量：４ｗｔ．％Ｘ＝２００ｇ、Ｙ＝５３２ｇ、Ｚｍ＝５２８．４ｇ（ＺｄおよびＺｗは重量の変化が微少で、電子天秤の誤差範囲内であった。）
水分蒸発率（２４hour）＝１００×（５３２－５２８．４）／（２００×３０）＝０．０６％＜条件－２＞無糖培地、フィルター面積を＜条件－１＞の７．６倍とした以外は、＜条件－１＞と同様。
【０２９１】Ｘ＝２００ｇ、Ｙ＝５３２ｇ、Ｚｗ＝５２５ｇ（Ｚｄは重量の変化が微少で、電子天秤の誤差範囲内であった。）
水分蒸発率（２４hour）＝１００×（５３２－５２５）／（２００×７）＝０．５％＜条件－３＞最初の水分量Ｘ＝１００ｇとした以外は、＜条件－２＞と同様。
【０２９２】Ｘ＝１００ｇ、Ｙ＝４３２ｇ、Ｚｗ＝４２５ｇ（Ｚｄは重量の変化が微少で、電子天秤の誤差範囲内であった。）
水分蒸発率（２４hour）＝１００×（４３２－４２５）／（１００×７）＝１．０％＜条件－４＞最初の水分量Ｘ＝５０ｇとした以外は、＜条件－２＞と同様。
【０２９３】Ｘ＝５０ｇ、Ｙ＝３８２ｇ、Ｚｗ＝３７５ｇ（Ｚｄは重量の変化が微少で、電子天秤の誤差範囲内であった。）
水分蒸発率（２４hour）＝１００×（３８２－３７５）／（５０×７）＝２．０％＜条件－５＞容器上部の蓋を取り外した以外は、＜条件－２＞と同様。
【０２９４】
Ｘ＝２００ｇ、Ｙ＝５２５ｇ、Ｚｄ＝５１５ｇ水分蒸発率（２４hour）＝１００×（５２５－５１）／（２００）＝５．０％＜条件－６＞培養室内で、セル苗的に育成、地上部開放（培養条件）
容器の大きさ、材質：上部２×２ｃｍ（略四角形）、下部１×１ｃｍ、高さ４ｃｍ、１０連結（２×５個）；ハイインパクト・ポリスチレン蓋：なし寒天の重量：０．０６ｇ糖の量：０Ｘ＝１００ｇ、Ｙ＝１７０ｇ、Ｚｄ＝１３８．８ｇ水分蒸発率（２４hour）＝１００×（１７０－１３８．８）／（１００）＝３１．２％＜条件－７＞温室内で、ポット苗的に育成、地上部開放温室内のため、温度は１８～２８℃の範囲内で、湿度は５０～９９％の範囲内で変動した。
【０２９５】（培養条件）
容器の大きさ、材質：直径１１ｃｍ、高さ７．２ｃｍ；ポリスチレン蓋：なし寒天の重量：０．１５ｇ糖の量：０Ｘ＝２５０ｇ、Ｙ＝２６５ｇ、Ｚｄ＝２４５ｇ水分蒸発率（２４hour）＝１００×（２６５－２４５）／（２５０）＝８．０％実施例１３プラントボックス（柴田ハリオ（株）、ポリカーボネイト製、上部７５×７５ｍｍ、下部６５×６５ｍｍ、高さ１００ｍｍ）中に、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ３ｇを、ハイポネックス培養液（ハイポネックス７－６－１９（ハイポネックスジャパン（株）製）３．５ｇ／Ｌ、活性炭２ｇ／Ｌ含有）１５０ｍｌ中に混合分散させた。得られた分散液をオートクレーブ滅菌（１２１℃、１．２Ｋｇ／ｃｍ²、２０分間）した後、室温で放置したところ、該Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈが培養液を完全に吸収してゲル化した。
【０２９６】このようにしてプラントボックス内に配置したゲル表面に、蘭の苗たるＭＦＭＭ（Cym. MELODY FAIR 'Marilyn Monroe'）を、それぞれの苗の間隔がほぼ等間隔になるように（４列×４行）移植し、培養室内で培養（２５℃、３０００Ｌｕｘ、１６ｈ日長）内で無菌的に培養した。
【０２９７】上記の培養開始から７０日後、プラントボックスの蓋を開け、ハイポネックス溶液（ハイポネックス７－６－１９１ｇ／Ｌ）を７５ｍｌ加え、培養中の水分の蒸発と、植物体の水分吸収により収縮していたＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈに再吸収させ、該容器の蓋を開放したまま、温室内で連続的に苗を栽培した。灌水は、３～４日毎に容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０２９８】温室内での栽培開始から６０日後、単鉢栽培に移行するため該容器から苗を１本ずつ取り出した。地上部は順調に生長していたが、苗同士の根が多少絡みついており、苗の取り出しに若干の時間を要した。また、温室栽培移行後の根の伸びが、後述する実施例１４の場合に比べて、若干劣っていた。
【０２９９】このように成長させた苗の根に上記ゲルを付着させたまま、グローウェルＭＯ－２（ニュージーランド産バーク、（有）向山蘭園）を外側に配置しつつ、３号黒ビニールポット（直径９ｃｍ、兼弥商店製）内に移植し、温室内で通常の栽培を行った。６０日後も苗は順調に生長した。
比較例１３実施例１３で用いたものと同様のプラントボックス内で、寒天０．９ｇを、実施例１３で用いたハイポネックス培養液１５０ｍｌ中に混合分散させた。実施例１３と同様に該分散液をオートクレーブ滅菌した後、室温で放置して、該培地を完全にゲル化させた。
【０３００】このようにしてプラントボックス内に配置したゲル表面に、実施例１３と同様に蘭の苗たるＭＦＭＭを１６本移植し、培養室内で培養した。
【０３０１】７０日後、プラントボックスの蓋を開け、実施例１３で用いたハイポネックス溶液を７５ｍｌ加えた。しかしながら、培養中の水分蒸発と、植物体の水分吸収により収縮していた寒天ゲルは、該溶液を殆ど再吸収しなかった。
【０３０２】プラントボックスの蓋を開放したまま、実施例３と同様に温室内で連続的に苗を栽培した。灌水は３～４日毎に容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０３０３】栽培開始から３０日後、雑菌が支持体上に繁殖し、苗の下葉と、殆どの根が腐ってしまい、その後の栽培が不可能となった。
実施例１４実施例１３で用いたものと同様のプラントボックス内で、実施例１３で使用したハイポネックス培養液１５０ｍｌ中に、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ２．３１ｇと、多孔体たるアサノパーライト（日本セメント株式会社）７．２ｇとを混合分散させた。得られた分散液を、格子状のポリエステル製シート（厚さ０．１５ｍｍ、高さ２５ｍｍ、東レ社製）で１６の区分が出来るように分割し、オートクレーブ滅菌した後、室温にて放置したところ、該Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈが培養液を吸収してゲル化した。室温（２５℃）における、高分子ゲルとアサノパーライトとの「見かけの体積比」は約１：１であった。
【０３０４】このようにしてプラントボックス内で、図２６の模式斜視図に示すように、格子状のポリエステル製シートで１６分割した（図２６には９分割の例を示す）。このように分割したゲル表面に、蘭の苗たるＭＦＭＭを各区分に１本づつ（合計１６本）移植し、実施例１３と同様に培養室内で培養した。
【０３０５】培養開始から７０日後、プラントボックスの蓋を開け、実施例１３で使用したハイポネックス溶液を７５ｍｌ加えて、培養中の水分の蒸発と、植物体の水分吸収により収縮していたＣ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈに再吸収させた後、該容器の蓋を開放したまま、実施例１３と同様に温室内で連続的に苗を栽培した。灌水は３～４日毎に容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０３０６】温室内での栽培開始から６０日後、単鉢栽培に移行するため、苗を１本ずつ取り出した。この際、格子状のシートにより苗同士の根が絡みつきが効果的に防止されており、苗の取り出しが容易であった。苗の地上部も順調に生長していた。おり、また、温室栽培移行後の根の伸びも順調であった。本発明者の知見によれば、この根の順調な伸びは、多孔体としてアサノパーライトを予め培地に添加していたことによるものと推定された。
【０３０７】根に支持体（ゲル＋多孔体）を付着させたまま、実施例１３と同様にグローウェルＭＯ－２を外側に配置しつつ、３号黒ビニールポットに移植し、温室内で通常の栽培を実施した。単鉢栽培から６０日後も、苗は順調に生長した。
比較例１４実施例１３で用いたものと同様のプラントボックス内で、実施例１３で使用したハイポネックス培養液１５０ｍｌ中に、寒天０．７ｇと、アサノパーライト７．２ｇとを混合分散させ、更に実施例１４と同様に格子状のポリプロピレン製シートで１６分割した後、オートクレーブ滅菌し、室温で放置てし、培地を完全にゲル化させた。
【０３０８】このようにして得たゲル表面に、実施例１４と同様に蘭の苗たるＭＦＭＭを１６本移植し、培養室内で培養した。培養開始から７０日後、該容器の蓋を開け、実施例１３で使用したハイポネックス溶液を７５ｍｌ加えた。しかしながら、培養中の水分蒸発と、植物体の水分吸収により収縮していた寒天ゲルは該溶液を殆ど再吸収しなかった。
【０３０９】次いで、プラントボックスの蓋を開放したまま、実施例１４と同様に温室内で連続的に苗を栽培した。灌水は３～４日毎に容器全体の重さが初期値と同じになるように行った。
【０３１０】温室内での栽培開始から３０日後、雑菌が支持体上に繁殖し、苗の下葉と、殆どの根が腐ってしまい、その後の栽培が不可能となった。したがって、本比較例においては、アサノパーライト添加と、格子状のポリプロピレン製シートによる１６分割とは無意味となってしまった。
実施例１５実施例１３で用いたものと同様のプラントボックス内で、ハイポネックス有糖培養液（ハイポネックス７－６－１９（ハイポネックスジャパン（株）製）３．５ｇ／Ｌ、シュークロース３０ｇ／Ｌ、活性炭２ｇ／Ｌ含有）１５０ｍｌ中に、実施例１で作製した乾燥Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈ３ｇを混合分散させ、オートクレーブ滅菌した後、室温にて放置したところ、該Ｃ－ＰＮＩＰＡＡｍ－Ｈが培養液を完全に吸収してゲル化した。
【０３１１】このようにして得たゲルに、蘭の苗たるＲＧ３１０（Cym. ENZAN SYMPHONY 'RG310'）を実施例１３と同様に１６本移植し、培養室内で培養した。
【０３１２】培養開始から７０日後、該プラントボックスを３５℃の温水に２０分間浸漬したとこ�